Abstrakt

Odkrycie nowej klasy cząsteczek, jakimi są krótkie, 22-24-nukleotydowe RNA, zapoczątkowało nowy rozdział badań nad regulacją ekspresji informacji genetycznej. Szczególnie dużą uwagę skupiono na zewnątrzkomórkowe, krążące miRNA, których poziom ekspresji w różnych płynach fizjologicznych jest zróżnicowany i może ulegać zmianie zarówno pod wpływem czynników patologicznych jak i fizjologicznych. Intensywne badania są prowadzone pod kątem ich potencjału diagnostycznego. Podejmowane są próby określenia konkretnych profili miRNA skorelowanych z chorobą. Obiecujące wyniki pozwalają wierzyć, że w niedalekiej przyszłości miRNA będą mogły być stosowane jako diagnostyczne i prognostyczne biomarkery w różnych chorobach. Zastosowanie krążących miRNA może się okazać szczególnie przydatne w diagnozowaniu raka płuca – choroby nowotworowej, której bardzo wysoka śmiertelność wynika głównie ze zbyt późnej diagnozy. Obfite w cząsteczki miRNA krew i plwocina są doskonałym materiałem diagnostycznym u chorych na ten typ nowotworu, a zwłaszcza u chorych z niedrobnokomórkowym rakiem płuca – NSCLC. Dzięki prostym procedurom pozyskiwania materiału i relatywnie łatwej analizie poziomu ekspresji miRNA, cząsteczki te będą mogły zostać wykorzystane jako biomarkery diagnostyczne, prognostyczne oraz predykcyjne w terapii NSCLC. W artykule przedstawiono informacje dotyczące miRNA oraz ich swoistych właściwości. Ponadto omówiono krążące miRNA, których poziom ekspresji uległ zmianie w płynach fizjologicznych chorych na NSCLC.

Wykaz skrótów:

ABs – ciałka apoptotyczne (apoptotic bodies); AC – rak gruczołowy (adenocarcinoma); AGO2 – białko argonautowe 2 (argonaute 2); ALK – kinaza chłoniaka anaplastycznego (anaplastic lymphoma kinase); DLBCL – chłoniak rozlany z dużych komórek B (diffuse large B-cell lymphoma); EGFR – receptor czynnika wzrostu naskórka (epidermal growth factor receptor); HDL – lipoproteina wysokiej gęstości (high density lipoprotein); LCC – rak wielkokomórkowy płuca (large cell carcinoma); LOH – utrata heterozygotyczności (loss of heterozygosity); MPs – mikrocząsteczki (microparticles); MVs – mikropęcherzyki (microvesicles); NPM1 – białko wiążące RNA (nucleophosmin 1); NSCLC – niedrobnokomórkowy rak płuca (non-small cell lung cancer); ORF – otwarta ramka odczytu (open reading frame); PDK1 – enzym należący do klas transferaz (3-phosphoinositide dependent protein kinase-1); PET – pozytonowa tomografia emisyjna (positron emission tomograph); RBPs – białka wiążące RNA (RNA-binding proteins); RISC – kompleks wyciszający ekspresję genu (RNA-induced silencing complex); RTG – zdjęcie rentgenowskie; SCC – rak płaskonabłonkowy (squamous cell carcinoma); SCLC – rak drobnokomórkowy płuca (small cell lung cancer); SNP – polimorfizm pojedynczych nukleotydów (single nucleotide polymorphism); TK – tomografia komputerowa (computed tomography); UTR – obszar mRNA nieulegający translacji (untranslated region).

Wstęp

Rak płuca jest najczęściej diagnozowanym nowotworem u mężczyzn i stanowi aż 21% diagnozowanych przypadków, natomiast u kobiet zajmuje drugie miejsce (9%) po nowotworach piersi (22%). W Polsce, w 2010 r. średnia zapadalność na ten typ nowotworu, jak i liczba zgonów były wyższe od średniej w pozostałych krajach UE. Współczynnik umieralności, w porównaniu z innymi chorobami nowotworowymi jest najwyższy: u mężczyzn wynosi około 31%, natomiast u kobiet 15% [więcej niż w przypadku raka piersi (13%)] [11]. Głównym czynnikiem tego stanu jest zbyt późna diagnoza. Wpływ na to mają m.in.: brak wczesnych objawów, duża heterogenność w obrębie histologicznych podtypów oraz wciąż ograniczona wiedza z zakresu biologii nowotworów [29].

Złośliwe nowotwory płuca charakteryzują się dużą heterogennością, dlatego nie powinno się ich traktować jednakowo. Najczęściej występującym nowotworem płuca jest nowotwór sklasyfikowany jako niedrobnokomórkowy rak płuca – NSCLC (non-small cell lung cancer), który stanowi aż 80% wszystkich przypadków. W tej grupie znajdują się typy histologiczne raków: płaskonabłonkowy SCC (squamous cell carcinoma; 40-50%), gruczołowy AC (adenocarcinoma; 30%) oraz wielkokomórkowy LCC (large cell carcinoma; 5-10%). Drugą grupę tworzy drobnokomórkowy rak płuca SCLC (small cell lung carcinoma), którego udział wynosi około 15% [40].

W celu potwierdzenia lub wykluczenia nowotworu są wykonywane badania przedmiotowe (fizykalne), zdjęcia radiologiczne (RTG) oraz tomografia komputerowa (TK) klatki piersiowej i jamy brzusznej. W razie diagnozy potwierdzającej, następnym krokiem w diagnostyce jest ustalenie stopnia zaawansowania nowotworu. W tym celu przeprowadza się badania mikroskopowe i histopatologiczną obserwację bioptatów. Metody pozyskiwania bioptatów cechują się relatywnie niewielką inwazyjnością, jednak ze względu na trudno dostępne umiejscowienie zabiegi wymagają starannego zaplanowania. W wybranych przypadkach przeprowadza się m.in. pozytonową tomografię emisyjną (PET) lub rezonans magnetyczny. Nie ma jeszcze programu badań przesiewowych do wczesnego wykrywania raka płuca, a standardowe zdjęcia rentgenowskie klatki piersiowej oraz cytologiczne badania plwociny nie wpływają istotnie na spadek umieralności [40]. Duże nadzieje wiąże się z niskodawkową tomografią komputerową klatki piersiowej, jednak zwiększona skuteczność tej metody w porównaniu do RTG klatki piersiowej nie jest wciąż potwierdzona. Metoda generuje dużą liczbę wyników fałszywie dodatnich przyczyniających się do niepotrzebnego leczenia chorych (wykrywa niezłośliwe guzki płuca), a ponadto jest kosztowna i może negatywnie wpływać na zdrowie. Wszystkie wymienione aspekty sprawiają, że nie stosuje się jej rutynowo [2,35].

Prawie 2/3 NSCLC można sklasyfikować podczas badania patomorfologicznego tradycyjnymi metodami z użyciem mikroskopu świetlnego. Pozostałe 30% NSCLC wymaga jednak pomocniczych technik, przede wszystkim immunohistochemicznych. Szczegółowa klasyfikacja słabo zróżnicowanych nowotworów jest ogromnym wyzwaniem, które często utrudnia ograniczona ilość materiału diagnostycznego. Przy pojawiających się coraz nowszych strategiach terapii, aby były skuteczne, niezbędne jest odpowiednie dopasowane ich do profilu molekularnego danego nowotworu. Wszystkie te czynniki powodują, że poszukuje się nowych, skuteczniejszych biomarkerów, które byłyby dokładniejsze i tym samym przyczyniły się do bardziej skutecznego leczenia [48].

Idealny biomarker powinien być łatwo dostępny za pomocą nieinwazyjnych procedur, niedrogi w pomiarze oraz bardzo swoisty i czuły w diagnozowaniu choroby. Najważniejsze, aby rzetelnie wskazywał chorobę, najlepiej jeszcze przed pojawieniem się jej klinicznych symptomów. Ponadto, nie może być podatny na techniczne zmienne oraz inne patologiczne stany niezwiązane z badaną chorobą, a występujące u chorych [34].

Bardzo istotnym, choć niełatwym zadaniem jest zidentyfikowanie biomarkerów umożliwiających przewidywanie skutków leczenia i odpowiedzi na terapeutyki, które pozwolą na dobór odpowiedniej – „skrojonej na miarę” terapii. Markery molekularne stwarzają nowe możliwości w diagnostyce i wydają się łatwiejsze w interpretacji, a dzięki krążącym miRNA, jako nieinwazyjnym biomarkerom, istnieje szansa stworzenia programu badań przesiewowych oraz programu identyfikacji osób z wyższym ryzykiem NSCLC. Tym samym, osoby te mogłyby być objęte odpowiednią opieką medyczną już we wczesnym etapie.

miRNA

W 1993 r. Victor Ambros oraz Gary Ruvkun pracując nad Caenorhabditis elegans dokonali odkrycia, które zrewolucjonizowało i zapoczątkowało nową erę. Zaobserwowali zależność między ilością białka LIN14 a 22 nukleotydowym RNA, kodowanym przez gen LIN-4, który bierze udział w rozwoju C. elegans. Odkrycie tego potranskrypcyjnego wyciszania docelowego mRNA przez małe cząsteczki RNA zmieniło rozumienie systemu kontroli ekspresji informacji genetycznej [27,66]. W kilkanaście lat później, w 2005 r. zasugerowano udział cząsteczek miRNA w procesie nowotworowym oraz możliwość ustalenia konkretnych profili miRNA, które w przyszłości będą mogły posłużyć jako markery diagnostyczne [31].

W przełomowych badaniach na mysim ksenogenicznym modelu raka stercza, ujawniona została zależność między ilością miRNA we krwi a rozmiarem nowotworu, jaki został przeszczepiony [36]. Inne badania potwierdziły tezę, że  zewnątrzkomórkowe miRNA są wykrywalne w surowicy krwi w powtarzalny sposób oraz że ich stężenie jest na podobnym poziomie u zdrowych osób. Zmiany poziomu cząsteczek miRNA mogą natomiast być następstwem różnorodnych fizjologicznych stanów, takich jak ciąża (w surowicy krwi ciężarnych kobiet są obecne łożyskowe miRNA, które mogą być wykorzystywane do określenia wieku ciąży) czy róż- nego typu schorzeń, infekcji wirusowych, a także chorób nowotworowych. Zasugerowano, że swoisty wzorzec miRNA (podwyższenie lub obniżenie ekspresji względem kontroli), zarówno we krwi, jak i w tkance, może być charakterystyczny dla danej choroby, a to umożliwia zastosowanie wybranych miRNA do monitorowania stanu fizjologicznego chorych. Zastosowanie miRNA w diagnostyce znacznie się poszerzyło dzięki odkryciu ich obecności także w innych płynach ustrojowych, m.in. w moczu, krwi, płynie z płukania oskrzelowego, mazi stawowej, mleku, ślinie, a także płynie mózgowo-rdzeniowym [16,36,64].

Dotąd zidentyfikowano 2588 dojrzałych miRNA transkrybowanych w ludzkim genomie (miRBase, 21.0, czerwiec 2014). Pojedynczy miRNA może modulować nawet tysiące genów przez rozpoznawanie komplementarnych sekwencji na końcu 3’ UTR docelowego mRNA. Szacuje się, że około 30% ludzkich mRNA znajduje się pod ścisłą regulacją miRNA, jednak liczba ta zwiększa się po uwzględnieniu doniesień wskazujących na możliwość łączenia się pewnych miRNA także z regionem 5’ UTR oraz z regionem ORF (open reading frame) (jednak w takich przypadkach występują rzadziej i działają mniej efektywnie) [32]. Endogenne miRNA wpływają na procesy zachodzące w komórkach, takie jak proliferacja, naprawa DNA, różnicowanie komórek, metabolizm i apoptoza, jednak biologiczna funkcja krążących miRNA wymaga zbadania. Przypuszcza się, iż niektóre zewnątrzkomórkowe miRNA mogą być nośnikami informacji między komórkami podczas wielu fizjologicznych i  patologicznych procesów [56]. W zależności na jakie geny wpływają, miRNA mogą funkcjonować jako onkomiry – prokancerogenne lub jako miRNA supresorowe – działające hamująco na onkogeny [10]. Mechanizmy, np. zmiany genetyczne (mutacje punktowe i polimorfizm pojedynczych nukleotydów SNP) oraz epigenetyczne w obrębie genów miRNA mogą wpływać na ich ekspresję, a tym samym doprowadzić do zmian w ekspresji docelowych genów. Geny kodujące miRNA często są umiejscowione w obrębie łamliwych miejsc chromosomów, obszarów utraty heterozygotyczności LOH oraz minimalnych regionów amplifikacji, co potwierdza teorię związku miRNA z procesem nowotworowym. Zmiany ilościowe dojrzałych cząsteczek miRNA mogą być także spowodowane nieprawidłowościami związanymi z białkami biorącymi udział w biogenezie cząsteczek miRNA [4].

Krążące miRNA: stabilność oraz teorie pochodzenia

Pierwsze krążące miRNA wykryto w układzie krwiono- śnym osób chorych na chłoniaka rozlanego z dużych komórek B DLBCL (diffuse large B-cell lymphoma). Lawrie i wsp. ustalili, że miR-21, miR-10 oraz miR-155 mogą być rzetelnie oznaczane w surowicy krwi i pozwalają na odróżnianie osób chorych od zdrowych, a  ponieważ wykazują dużą stabilność zasugerowali również, że można je zastosować w diagnostyce klinicznej [25]. Wraz z  rozwojem badań zaczęto dostrzegać coraz większy potencjał cząsteczek miRNA w określaniu stopnia złośliwości nowotworu czy przewidywaniu skutków konkretnych terapii, a także w leczeniu chorych z nowotworami płuca i wykrywaniu wczesnego stadium NSCLC [29].

miRNA – w przeciwieństwie do mRNA – zarówno w osoczu, surowicy, świeżo mrożonych tkankach, bloczkach parafinowych, jak i ślinie, cechują się odpornością na działanie endo – i egzogennych RNaz, ekstremalnych temperatur i pH. Odznaczają się dużą stabilnością przez długi okres, nawet pozostawione w temperaturze pokojowej. Z punktu widzenia diagnostyki klinicznej wymienione cechy determinują cząsteczki miRNA, jako doskonałe biomarkery, zwłaszcza, gdy zwróci się uwagę na potrzebę wielokrotnego mrożenia i rozmrażania materiału diagnostycznego, co dość często zdarza się podczas przetwarzania próbek laboratoryjnych [7,16,36]. Ponieważ syntetyczne oraz uzyskane z krwi, a następnie oczyszczone miRNA, po ponownym wpuszczeniu do ludzkiego osocza były podatne na działanie endogennych RNaz i ulegały natychmiastowej degradacji, zaczęto badać przyczyny ich swoistej stabilności [36]. Dotychczas powstało wiele hipotez wyjaśniających pochodzenie oraz właściwości krążących miRNA, które ściśle wiążą się ze sobą i najprawdopodobniej nie wykluczają wzajemnie. Wymienia się trzy wiodące teorie. Pierwsza, opiera się na twierdzeniu, że występowanie miRNA we krwi jest działaniem niepożądanym zniszczenia komórki i następuje wskutek niewymagającego dostarczenia energii przeciekania komórkowych miRNA. Nastąpić to może w wyniku uszkodzenia tkanki charakterystycznego dla poszczególnych etapów kancerogenezy, wejścia komórki w stan zapalny, apoptozy czy podczas tworzenia przerzutów. Druga hipotezazakłada aktywny proces uwalniania miRNA z komórki w sposób zależny od mikropęcherzyków MVs (microvesicles). Natomiast trzecia teoria, mówi o aktywnym i selektywnym wydzielaniu miRNA w postaci niezależnej i wolnej od MVs, będącym następstwem odpowiedzi komórki na różnorodne bodźce [71].

Mikropęcherzyki są pochodzenia komórkowego i przez fuzję z błoną komórkową mogą zostać uwolnione z komórki. Zalicza się do nich MPs (microparticles) (>100 nm średnicy) i egzosomy (50-90 nm średnicy), a także większych rozmiarów ciałka apoptotyczne ABs (apoptotic bodies), wytwarzane w odpowiedzi na apoptotyczne bodźce. MVs wykryto zarówno w osoczu, moczu, jak i innych płynach fizjologicznych, a zdolność uwalniania miRNA przez MVs ma większość komórek funkcjonujących w patologicznych, jak i fizjologicznych warunkach [71]. Validi i wsp. [59] w pionierskiej pracy jako pierwsi poinformowali o transporcie miRNA za pośrednictwem egzosomów, które funkcjonując jako wehikuł transportujący miRNA między komórkami, mogą wpływać na ich aktywność i wytwarzanie białek. Jedna ze strategii badania krążących miRNA polega na izolowaniu miRNA związanego z egzosomami. W badaniach z udziałem osób chorych na NSCLC, przeprowadzonych przez Rabinowitsa i wsp. [46] stwierdzono podwyższony poziom wybranych egzosomowych miRNA w porównaniu z grupą kontrolną. Natomiast w badaniach Silva i wsp. [54] odnotowano obniżony poziom miR-let-7f, miR – 30e-3p oraz miR-20b związanych z MVs względem zdrowych osób.

Za dużą stabilność cząsteczek miRNA, oprócz wymienionych wyżej czynników, mogą odpowiadać także białka wiążące RNA RBPs (RNA-binding proteins) oraz lipoproteiny. Funkcją białek wiążących miRNA jest nie tylko ochrona cząsteczki miRNA przed degradacją, ale też czynny udział w kontrolowanym upakowywaniu swoistych miRNA w  egzosomy oraz ich eksport poza komórkę. Do głównych RBPs zalicza się białko AGO2 (Argonaute 2) należące do kompleksu RISC (RNA-induced silencing complex) oraz NPM1 (Nucleophosmin 1). Kompleks miRNA-AGO2 cechuje się dużą stabilno- ścią. Wymagane są jednak dalsze badania, aby określić wielkość skali na jaką może być uwalniany z komórki. Szacuje się, że ta frakcja może się składać nawet z 90% wszystkich krążących miRNA [15,57,70].

Arroyo i wsp. [1] zasugerowali, że na podstawie analizy konkretnych miRNA obecnych we krwi oraz formy jaką przybrały, możliwe jest określenie z jakiego typu komórki pochodzą i tym samym odzwierciedlenie komórkowo swoistych miRNA bądź też swoistych metod ich uwalniania przez dany typ komórki. Badanie miRNA pod kątem swoistej frakcji, może znacząco zwiększyć zarówno czułość, jak i swoistość wyselekcjonowanych krążących miRNA jako nieinwazyjnych biomarkerów.

Vickers i wsp. [60] donoszą o znaczącej roli, jaką może peł- nić lipoproteina o dużej gęstości HDL (high density lipoprotein) w zapewnianiu stabilności oraz podczas uwalniania miRNA z komórki. Badania in vitro i in vivo potwierdzają rolę kompleksu HDL-miRNA w transporcie miRNA między komórkami, co może spowodować wystąpienie znacznych zmian w ekspresji genów w tych komórkach [60].

Krążące miRNA jako nieinwazyjne biomarkery nsclc

Możliwość nieinwazyjnego wykrywania nowotworów, zwłaszcza w ich wczesnym stadium rozwoju, jest dużym wyzwaniem. Uzyskane rezultaty są różne między poszczególnymi badaniami, niemniej jednak wszyscy zgodnie donoszą o występowaniu istotnych zmian w poziomie krążących miRNA u chorych na NSCLC. Dotychczasowe wyniki są obiecujące i przybliżają do odnalezienia odpowiednich profili miRNA, które pozwolą na bardziej szczegółowe diagnozowanie chorych.

Istotnym ograniczeniem badań nad krążącymi miRNA jest zawężona liczba chorych biorących udział w poszczególnych eksperymentach. Duże zróżnicowanie podtypów NSCLC znacząco utrudnia dobór odpowiednich przypadków do konkretnych analiz. W badaniach dotyczących identyfikacji biomarkerów do wczesnego wykrywania NSCLC wyniki analizowane są najczęściej w porównaniu do zdrowych dawców. Optymalne dobranie chorych z grupą kontrolną jest istotne, a oprócz wieku i płci powinno się również uwzględniać liczbę wypalonych papierosów w ciągu życia, mierzoną w paczkolatach. Największym problemem jest jednak ciągle dobór odpowiedniego referencyjnego miRNA w badaniach z użyciem metody qRT-PCR (quantitative real-time PCR). Aby wyniki z różnych badań można było analizować i porównywać, najważniejsze jest ujednolicenie ich przez określenie odpowiedniej i uniwersalnej normalizacji. Najczęściej stosowanymi genami referencyjnymi są RNU6B [13,17,22,37,42,55] oraz miR-16 [20,26,51,65], jednak sygnalizuje się o ich nieadekwatności, a nieścisłości związane z wyborem odpowiedniej normalizacji pojawiają się często. Wang i wsp. [63] donoszą o potencjalnej prognostycznej funkcji miR-16, którego podwyższony poziom we krwi jest związany z korzystnym rokowaniem chorych z zaawansowanym stadium NSCLC, natomiast Keller i wsp. [24] zanotowali obniżony poziom tego miRNA we krwi pobranej od osób chorych na NSCLC jeszcze przed zdiagnozowaniem choroby. Binachi i wsp. [3] do normalizacji wyników użyli miR-197 oraz miR-24, jednak kilkoro innych badaczy donosi o zmianach w poziomie ekspresji zarówno miR-24 u chorych na NSCLC [8,13,26], jak i o podwyższonym poziomie ekspresji miR-197 u chorych, u których pojawiły się przerzuty [74].

Diagnostyczne krążące miRNA w nsclc

Odkrycie rzetelnych biomarkerów wykrywających nowotwór we wczesnym i bezobjawowym stadium choroby, mogłoby zrewolucjonizować stosowane procedury i byłoby przełomem w klinicznym postępowaniu i diagnozowaniu chorych z bezobjawowym NSCLC. Prowadzone są intensywne prace, które być może w przyszłości przyczynią się zarówno do rozwoju diagnostyki, jak i pogłębienia wiedzy dotyczącej procesów nowotworowych. Podstawowym zadaniem związanym z krążącymi miRNA jest jak najwcześniejsze diagnozowanie choroby. W wyselekcjonowaniu idealnego biomarkera z wszystkich miRNA, dużą rolę mogą odegrać badania metaanalityczne. Jedną z nielicznych metaanaliz dotyczących krążących miRNA przeprowadzili Chen i Jin [6]. Wykazali, że w  porównaniu do pojedynczego miRNA większą diagnostyczną moc ma jednoczesna analiza poziomu ekspresji kilku miRNA. Stwierdzili również, że analiza ekspresji miRNA obecnych we krwi jest bardziej wiarygodna niż w badaniu ekspresji miRNA w plwocinie. W tabeli 1 przedstawiono zbiór krążących miRNA, które mogą być przydatne w diagnozowaniu NSCLC.

Chen i wsp. [8] w badaniach obejmujących aż 400 chorych z NSCLC ustalili profil składający się z 10 miRNA występujących w surowicy krwi (miR-20a, miR-222, miR- 221, miR-320, miR-152, miR-145, miR-223, miR-199a-5p, miR-4, miR-25), umożliwiający detekcję NSCLC. Już wcześniej raportowali o podwyższonej ekspresji miR- 25 i miR-223 również w surowicy osób z nowotworem płuca [7]. Badania Jeonga i wsp. [21] wskazały na obni- żony poziom miRNA let-7a we krwi chorych z NSCLC w porównaniu ze zdrowymi osobami. Zheng i wsp. [74] zauważyli, że poziom miR-155, miR-97 oraz miR-182 był znacznie podwyższony w osoczu osób chorych w porównaniu z grupą kontrolną zdrowych dawców. Stwierdzono, że te miRNA mogą posłużyć do rozróżniania nowotworu w każdym stadium. Panel 12 egzosomowych miRNA (miR-155, miR-21, miR-17-3p, miR-106a, miR- 146, miR-191, miR-192, miR-203, miR-205, miR-210, miR- 212, miR-214) opracowany przez Rabinowitsa i wsp. [46] może posłużyć w testach do wykrywania AC. Foss i wsp. [12] zaobserwowali podwyższony poziom w surowicy miR-1254 oraz miR-574-5p u chorych na NSCLC. Keller i wsp. [24] przeprowadzili ważne badania na surowicach krwi osób chorych na nowotwór płuca, pobranych na długo przed wystąpieniem objawów choroby. Największe zmiany w ekspresji miRNA wykryto gdy odstęp między zdiagnozowaniem choroby a pobraniem krwi był mniejszy. Sugerowano jednak, że dzięki badaniu ekspresji miRNA przewidzenie choroby jest możliwe nawet na kilka lat przed jej zdiagnozowaniem.

Powrózek i wsp. [43] zaobserwowali, że w wykrywaniu wczesnego stadium NSCLC duże znaczenie mogą mieć krążące miRNA-448 oraz miR-4478, których poziom – w porównaniu ze zdrowymi dawcami – określono jako znacznie podwyższony u chorych we wczesnym stadium choroby. Bianchi i wsp. [3] opracowali test surowicy obejmujący panel 34 miRNA, który pozwala identyfikować chorych we wczesnym i  bezobjawowym stadium NSCLC. Natomiast Shen i wsp. [51] wykryli, że ekspresja krążących miR-21 i miR-210 była podwyższona, a miR- 126 i miR-486-5p obniżona u chorych z NSCLC. Dotyczy to również chorych w I stadium nowotworu, a zmiany w ekspresji wymienionych miRNA są analogiczne również w tkance nowotworowej u tych osób. Qi i wsp. [45] odnotowali zwiększoną ekspresje miR-17, miR-21, miR-192 w surowicy krwi chorych we wczesnym stadium nowotworu płuca. Według Zhu i wsp. [75] jednoczesna analiza miR-429 oraz miR-29c, których poziomy są odpowiednio obniżone i podwyższone, umożliwia rozróżnianie osób chorych w I stopniu NSCLC względem zdrowych.

W badaniach nad krążącymi miRNA w plwocinie chorych na NSCLC, Yu i wsp. [68] oraz Roa i wsp. [47] niezależnie zanotowali diagnostyczny potencjał krążącego miR-21, natomiast Shen i wsp. [50] informują o zmianach w poziomie ekspresji miR-31 oraz miR-210.

Tabela 1. Diagnostyczne krążące miRNA w NSCLC

Tabela 1. cd

AC – rak gruczołowy; NSCLC – niedrobnokomórkowy rak płuca; PDK1 – enzym należący do klas transferaz (3-phosphoinositide dependent protein kinase-1); SCLC – rak drobnokomórkowy płuca.

Prognostyczne krążące miRNA w nsclc

Mierząc poziom ekspresji konkretnych krążących miRNA, możliwe jest prognozowanie chorych z NSCLC. Ekspresja niektórych krążących miRNA ulega zmianie z chwilą usunięcia guza i ma tendencje do zwiększenia się lub zmniejszenia. Leidinger i wsp. [28] stwierdzili obecność większych zmian w poziomie krążących miRNA po resekcji guza u chorych bez przerzutów w porównaniu do chorych, u których przerzuty pojawiły się. W tabeli 2 przedstawiono wybrane krążące miRNA, które mogą się okazać niezwykle przydatne w prognozowaniu u osób chorych na NSCLC.

Hu i wsp. [19] dostrzegli, że analiza stopnia deregulacji ekspresji miR-486, miR-30d, miR-1 oraz miR-499 pozwala określić wskaźnik przeżyć chorych na NSCLC. W badaniach porównano grupę chorych z wyższym wskaźnikiem przeżycia z grupą o niższym wskaźniku przeżycia. Stwierdzono, że chorzy, u których deregulacji uległy co najmniej dwa z grupy wyselekcjonowanych miRNA mają gorsze rokowania niż osoby, u których nastąpiła deregulacja tylko jednego lub żadnego miRNA. Z badań Yuxia i wsp. [69] wynika, iż poziom ekspresji miR-125b w surowicy krwi jest powiązany z krótkim przeżyciem osób chorych na NSCLC. Analiza ekspresji tego miRNA nie umożliwia zdiagnozowanie wczesnego stadium choroby, jednak stwierdzono jego znacznie podwyższony poziom w stopniu III i IV NSCLC w porównaniu do stopnia I i II NSCLC. Profil 17 miRNA wyselekcjonowany przez Wanga i wsp. [63] istotnie jest powiązany z dwuletnim przeżyciem chorych na NSCLC. Natomiast Han i wsp. [17] donoszą, że obniżony poziom krążącego miR-138 u chorych na NSCLC w połączeniu z podwyższoną ekspresją PDK1 (3-phosphoinositide dependent protein kinase-1) jest wiarygodnym wskaźnikiem przewidującym niekorzystne rokowanie i krótszy czas przeżycia.

Tabela 2. Prognostyczne krążące miRNA w NSCLC

MVs – mikropęcherzyki; NSCLC – niedrobnokomórkowy rak płuca; PDK1 – enzym należący do klas transferaz (3-phosphoinositide dependent protein kinase-1).

Predykcyjne krążące miRNA w określaniu cech kliniczno- patologicznych

Jak już wspomniano, wraz z rozwojem nowych strategii i terapii w leczeniu chorych z NSCLC jest wymagana coraz bardziej szczegółowa klasyfikacja nowotworów płuca. Różne są swoiste profile ekspresji miRNA, w zależności od podtypu nowotworu, a relatywna łatwość i prostota pomiaru krążących miRNA we krwi może znacznie przyspieszyć procedury diagnostyczne. Deregulacja poziomu ekspresji miRNA występuje także w zależności od stopnia zaawansowania nowotworu oraz występowania przerzutów. Możliwość nieinwazyjnego określenia tych cech znacznie poprawiłaby jakość leczenia chorych z nowotworem płuca i zwiększyłaby ich szansę na otrzymanie możliwie jak najlepszej terapii. W tabeli 3 przedstawiono wybrane wyniki badań, w których odnotowano korelację cech kliniczno-patologicznych z poziomem ekspresji wybranych cząsteczek miRNA.

Jiang i wsp. [22] donoszą o podwyższonych poziomach miR-205-5p oraz miR-205-3p we krwi, co umożliwia rozróżnienie chorych z SCC od chorych z AC. Roth i wsp. [49] zaobserwowali obniżony poziom miR-625* w surowicy krwi chorych z LCC oraz chorych z NSCLC palących papierosy w porównaniu do chorych z AC i chorych niepalących. Powrózek i wsp. [44] określili przydatność krążących miR-944 i miR-3662 w diagnozowaniu odpowiednio SCC oraz AC: poziom tych cząsteczek w osoczu krwi był u osób chorych podwyższony. Wskazują również na udział tych cząsteczek w rozwoju histologicznych podtypów nowotworu. U chorych, u których pojawiły się przerzuty, Zheng i wsp. [74] odnotowali podwyższoną ekspresję miR-155 oraz miR-197.

Tabela 3. Predykcyjne krążące miRNA określające cechy kliniczno-patologiczne

AC – rak gruczołowy; LCC – rak wielkokomórkowy; MVs – mikropęcherzyki; NSCLC – niedrobnokomórkowy rak płuca; PDK1 – enzym należący do klas transferaz (3-phosphoinositide dependent protein kinase-1); SCC – rak płaskonabłonkowy.

Krążące miRNA jako czynnik pomocniczy w doborze odpowiedniej terapii

Ponieważ krążące miRNA mogą być pomocne w przewidywaniu swoistych mutacji dla danego typu nowotworu, umożliwia to ich zastosowanie do ustalenia odpowiedniej terapii. Mutacje wpływające na EGFR (epidermal growth factor receptor) występują w 40-80% NSCLC i wskazują na niekorzystne rokowanie u chorych oraz wystąpienie oporności na działanie leku Geftinib, który jest inhibitorem kinazy tyrozynowej EGFR. Geftinib jest powszechnie używany w NSCLC z dobrym skutkiem, niestety nie u wszystkich chorych. Wyselekcjonowanie kandydatów do leczenia Geftinibem przyniosłoby ogromne korzyści, a analiza mutacji wpływających na EGFR w zaawansowanych stadiach NSCLC umożliwiłaby chorym optymalną terapię celowaną [72]. Zhao i wsp. [72] wyselekcjonowali 5 krążących miRNA (miR-195, miR-122, miR-125b, miR- 21 oraz miR-25), które potwierdzają obecność mutacji wpływającej na EGFR i mogą posłużyć do ocenienia skuteczności działania leku Geftinib. Shen i wsp. [52] opisują także prognostyczne możliwości krążącego miR-21. W wyniku przeprowadzonych badań zauważyli, że chorzy, którym usunięto nowotwór z mutacją wpływającą na EGFR, mieli podwyższony – w porównaniu z osobami bez tej mutacji – poziom ekspresji miR-21 we krwi. U osób, u których poziom miR-21 oraz miR-10b był podwyższony, stwierdzono niższy wskaźnik przeżycia, ale lepszą odpowiedź na Geftinib, w porównaniu do chorych z niższą ekspresja wspomnianych miRNA.

W leczeniu chorych z NSCLC często stosuje się chemioterapię bazującą na leku Pemetrexed. Franchina i wsp. [13] zauważyli zależność odpowiedzi na leczenie Pemetrexedem chorych, u których ekspresja krążącego miR-22 była wyższa. Chorzy nie odpowiadali na leczenie, a choroba była u nich postępująca. Shi i wsp. [53] natomiast sugerują znaczącą rolę miR- 25, miR-145 oraz miR-210 w określaniu skuteczności leczenia u chorych na AC, u których nie stwierdzono translokacji genu ALK (anaplastic lymphoma kinase) ani mutacji w genie EGFR.

Według Gao i wsp. [14] chorzy po całkowitym usunięciu guza, którzy wykazywali relatywnie niższą ekspresję miR-21, zarówno krążących, jak i obecnych w tkance nowotworowej, lepiej – w porównaniu z chorymi, u których stwierdzono wyższą ekspresję tego miRNA – odpowiadali na chemioterapię opartą na cisplatynie. W określaniu stopnia złośliwości nowotworu oraz rokowania u chorych Han i wsp. [17] stwierdzili, że pomocne może być badanie poziomu krążącego miR-138 z PDK1. Badania in vitro ujawniły, że miR-138 wpływa na wrażliwość komórek nowotworowych na cisplatynę, co wskazuje rolę miRNA w rozwoju oporności u chorych leczonych tym chemioterapeutykiem [61].

W tabeli 4 przedstawiono wybrane krążące miRNA, które mogą w istotny sposób wpływać na występowanie oporności na leczenie chorych na NSCLC.

Tabela 4. Krążące miRNA pomocne w wyborze odpowiedniej terapii

EGFR – receptor czynnika wzrostu naskórka; NSCLC – niedrobnokomórkowy rak płuca.

Podsumowanie

Od czasu odkrycia cząsteczek miRNA zainteresowanie nimi jest coraz większe. Ich rola dalej nie jest w pełni poznana, jednak nie ulega wątpliwości, iż mają ogromny wpływ na komórkę i jej fizjologię. Deregulacje poziomu ekspresji miRNA obecnych w tkankach, jak i we krwi, są stwierdzane prawie we wszystkich chorobach, co uwidocznia ich znaczący udział w procesach patologicznych. Obecność oraz stabilność krążących miRNA w łatwej do pobrania krwi oraz plwocinie sprawiają, że użycie tych cząsteczek jako nieinwazyjnych biomarkerów jest bardzo obiecujące. Już teraz dotychczasowe wyniki pozwalają przypuszczać, że cząsteczki miRNA mogą się przyczynić do rozwoju badań przesiewowych do wczesnego wykrywania NSCLC, a dzięki określeniu poziomu ryzyka, które stanowi olbrzymią troskę w dobie spersonalizowanej medycyny, miRNA może znacznie poprawić jakość leczenia chorych na NSCLC.

Przypisy

• 1. Arroyo J.D., Chevillet J.R., Kroh E.M., Ruf I.K., Pritchard C.C., Gibson D.F., Mitchell P.S., Bennett C.F., Pogosova-Agadjanyan E.L., Stirewalt D.L., Tait J.F., Tewari M.: Argonaute2 complexes carry a population of circulating microRNAs independent of vesicles in human plasma. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2011; 108: 5003-5008
  Google Scholar
• 2. Bach P.B., Mirkin J.N., Oliver T.K., Azzoli C.G., Berry D.A., Brawley O.W., Byers T., Colditz G.A. Gould M.K., Jett J.R., Sabichi A.L., Smith- -Bindman R., Wood D.E., Qaseem A., Detterbeck F.C.: Benefits and harms of CT screening for lung cancer: a systematic review. JAMA, 2012; 307: 2418-2429
  Google Scholar
• 3. Bianchi F., Nicassio F., Marzi M., Belloni E., Dall’olio V., Bernard L., Pelosi G., Maisonneuve P., Veronesi G., Di Fiore P.P.: A serum circulating miRNA diagnostic test to identify asymptomatic high-risk individuals with early stage lung cancer. EMBO Mol. Med., 2011; 3: 495-503
  Google Scholar
• 4. Calin G.A., Sevignani C., Dumitru C.D., Hyslop T., Noch E., Yendamuri S., Shimizu M., Rattan S., Bullrich F., Negrini M., Croce C.M.: Human microRNA genes are frequently located at fragile sites and genomic regions involved in cancers. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2004; 101: 2999-3004
  Google Scholar
• 5. Cazzoli R., Buttitta F., Di Nicola M., Malatesta S., Marchetti A., Rom W.N., Pass H.I.: MicroRNAs derived from circulating exosomes as non-invasive biomarkers for screening and diagnosing lung cancer. J. Thorac. Oncol., 2013; 8: 1156-1162
  Google Scholar
• 6. Chen L., Jin H.: MicroRNAs as novel biomarkers in the diagnosis of non-small cell lung cancer: a meta-analysis based on 20 studies. Tumour Biol., 2014; 35: 9119-9129
  Google Scholar
• 7. Chen X., Ba Y., Ma L., Cai X., Yin Y., Wang K., Guo J., Zhang Y., Chen J., Guo X., Li Q., Li X., Wang W., Zhang Y., Wang J. i wsp.: Characterization of microRNAs in serum: a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases. Cell Res., 2008; 18: 997-1006
  Google Scholar
• 8. Chen X., Hu Z., Wang W., Ba Y., Ma L., Zhang C., Wang C., Ren Z., Zhao Y., Wu S., Zhuang R., Zhang Y., Hu H., Liu C., Xu L. i wsp.: Identification of ten serum microRNAs from a genome-wide serum microRNA expression profile as novel noninvasive biomarkers for nonsmall cell lung cancer diagnosis. Int. J. Cancer, 2012; 130: 1620-1628
  Google Scholar
• 9. Chu G., Zhang J., Chen X.: Serum level of microRNA-147 as diagnostic biomarker in human non-small cell lung cancer. J. Drug. Target, 2015; 10: 1-5
  Google Scholar
• 10. Croce C.M.: Causes and consequences of microRNA dysregulation in cancer. Nat. Rev. Genet., 2009; 10: 704-714
  Google Scholar
• 11. Didkowska J., Wojciechowska U.: Zachorowania i zgony na nowotwory złośliwe w Polsce. Krajowy Rejestr Nowotworów, Centrum Onkologii – Instytut im. Marii Skłodowskiej-Curie. http://onkologia. org.pl/k/epidemiologia/(09.04.2016)
  Google Scholar
• 12. Foss K.M., Sima C., Ugolini D., Neri M., Allen K.E., Weiss G.J.: miR- 1254 and miR-574-5p: serum-based microRNA biomarkers for early- -stage non-small cell lung cancer. J. Thorac. Oncol., 2011; 6: 482-488
  Google Scholar
• 13. Franchina T., Amodeo V., Bronte G., Savio G., Ricciardi G.R., Picciotto M., Russo A., Giordano A., Adamo V.: Circulating miR-22, miR-24 and miR-34a as novel predictive biomarkers to pemetrexed- -based chemotherapy in advanced non-small cell lung cancer. J. Cell Physiol., 2014; 229: 97-99
  Google Scholar
• 14. Gao W., Lu X., Liu L., Xu J., Feng D., Shu Y.: MiRNA-21: a biomarker predictive for platinum-based adjuvant chemotherapy response in patients with non-small cell lung cancer. Cancer Biol. Ther., 2012; 13: 330-340
  Google Scholar
• 15. Gibbings D.J., Ciaudo C., Erhardt M., Voinnet O.: Multivesicular bodies associate with components of miRNA effector complexes and modulate miRNA activity. Nat. Cell Biol., 2009; 11: 1143-1149
  Google Scholar
• 16. Gilad S., Meiri E., Yogev Y., Benjamin S., Lebanony D., Yerushalmi N., Benjamin H., Kushnir M., Cholakh H., Melamed N., Bentwich Z., Hod M., Goren Y., Chajut A.: Serum microRNAs are promising novel biomarkers. PLoS One, 2008; 3: e3148
  Google Scholar
• 17. Han L., Zhang G., Zhang N., Li H., Liu Y., Fu A., Zheng Y.: Prognostic potential of microRNA-138 and its target mRNA PDK1 in sera for patients with non-small cell lung cancer. Med. Oncol., 2014; 31: 129
  Google Scholar
• 18. Hennessey P.T., Sanford T., Choudhary A., Mydlarz W.W., Brown D., Adai A.T., Ochs M.F., Ahrendt S.A., Mambo E., Califano J.A.: Serum microRNA biomarkers for detection of non-small cell lung cancer. PLoS One, 2012; 7: e32307
  Google Scholar
• 19. Hu Z., Chen X., Zhao Y., Tian T., Jin G., Shu Y., Chen Y., Xu L., Zen K., Zhang C., Shen H.: Serum microRNA signatures identified in a genome-wide serum microRNA expression profiling predict survival of non-small-cell lung cancer. J. Clin. Oncol., 2010; 28: 1721-1726
  Google Scholar
• 20. Huang J., Wu J., Li Y., Li X., Yang T., Yang Q., Jiang Y.: Deregulation of serum microRNA expression is associated with cigarette smoking and lung cancer. Biomed. Res. Int., 2014; 2014: 364316
  Google Scholar
• 21. Jeong H.C., Kim E.K., Lee J.H., Lee J.M., Yoo H.N., Kim J.K.: Aberrant expression of let-7a miRNA in the blood of non-small cell lung cancer patients. Mol. Med. Rep., 2011; 4: 383-387
  Google Scholar
• 22. Jiang M., Zhang P., Hu G., Xiao Z., Xu F., Zhong T., Huang F., Kuang H., Zhang W.: Relative expressions of miR-205-5p, miR-205-3p, and miR-21 in tissues and serum of non-small cell lung cancer patients. Mol. Cell Biochem., 2013; 383: 67-75
  Google Scholar
• 23. Joerger M., Baty F., Früh M., Droege C., Stahel R.A., Betticher D.C., von Moos R., Oschsenbein A., Pless M., Gautschi O., Rothschild S., Brauchli P., Klingbiel D., Zappa F., Brutsche M.: Circulating microRNA profiling in patients with advanced non-squamous NSCLC receiving bevacizumab/erlotinib followed by platinum-based chemotherapy at progression (SAKK 19/05). Lung Cancer, 2014; 85: 306-313
  Google Scholar
• 24. Keller A., Leidinger P., Gislefoss R., Haugen A., Langseth H., Staehler P., Lenhof H.P., Meese E.: Stable serum miRNA profiles as potential tool for non-invasive lung cancer diagnosis. RNA Biol., 2011; 8: 506-516
  Google Scholar
• 25. Lawrie C.H., Gal S., Dunlop H.M., Pushkaran B., Liggins A.P., Pulford K., Banham A.H., Pezzella F., Boultwood J., Wainscoat J.S. Hatton C.S., Harris A.L.: Detection of elevated levels of tumour-associated microRNAs in serum of patients with diffuse large B-cell lymphoma. Br. J. Haematol., 2008; 141: 672-675
  Google Scholar
• 26. Le H.B., Zhu W.Y., Chen D.D., He J.Y., Huang Y.Y., Liu X.G., Zhang Y.K.: Evaluation of dynamic change of serum miR-21 and miR-24 in pre – and post-operative lung carcinoma patients. Med. Oncol., 2012; 29: 3190-3197
  Google Scholar
• 27. Lee R.C., Feinbaum R.L., Ambros V.: The C. elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14. Cell, 1993; 75: 843-854
  Google Scholar
• 28. Leidinger P., Galata V., Backes C., Stähler C., Rheinheimer S., Huwer H., Meese E., Keller A.: Longitudinal study on circulating miRNAs in patients after lung cancer resection. Oncotarget, 2015; 6: 16674-16685
  Google Scholar
• 29. Lin P.Y., Yu S.L., Yang P.C.: MicroRNA in lung cancer. Br. J. Cancer, 2010; 103: 1144-1148
  Google Scholar
• 30. Lin Q., Mao W., Shu Y., Lin F., Liu S., Shen H., Gao W., Li S., Shen D.: A cluster of specified microRNAs in peripherial blood as biomarkers for metastatic non-small-cell lung cancer by stem-loop RT-PCR. J. Cancer. Res. Clin. Oncol., 2012; 138: 85-93
  Google Scholar
• 31. Lu J., Getz G., Miska E.A., Alvarez-Saavedra E., Lamb J., Peck D., Sweet-Cordero A., Ebert B.L., Mak R.H., Ferrando A.A., Downing J.R., Jacks T., Horvitz H.R., Golub T.R.: MicroRNA expression profiles classify human cancers. Nature, 2005; 435: 834-838
  Google Scholar
• 32. Lytle J.R., Yario T.A., Steitz J.A.: Target mRNAs are repressed as efficiently by microRNA-binding sites in the 5› UTR as in the 3› UTR. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2007; 104: 9667-9672
  Google Scholar
• 33. Ma J., Li N., Guarnera M., Jiang F.: Quantification of plasma miRNAs by digital PCR for cancer diagnosis. Biomark Insights, 2013; 8: 127-136
  Google Scholar
• 34. MacLellan S.A., MacAulay C., Lam S., Garnis C.: Pre-profiling factors influencing serum microRNA levels. BMC Clin. Pathol., 2014; 14: 27
  Google Scholar
• 35. Manser R., Lethaby A., Irving L.B., Stone C., Byrnes G., Abramson M.J., Campbell D.: Screening for lung cancer. Cochrane Database Syst. Rev., 2013; 6: CD001991
  Google Scholar
• 36. Mitchell P.S., Parkin R.K., Kroh E.M., Fritz B.R., Wyman S.K., Pogosova-Agadjanyan E.L., Peterson A., Noteboom J., O’Briant K.C., Allen A., Lin D.W., Urban N., Drescher C.W., Knudsen B.S., Stirewalt D.L. i wsp.: Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2008; 105: 10513-10518
  Google Scholar
• 37. Mo D., Gu B., Gong X., Wu L., Wang H., Jiang Y., Zhang B., Zhang M., Zhang Y., Xu J., Pan S.: miR-1290 is a potential prognostic biomarker in non-small cell lung cancer. J. Thorac. Dis., 2015; 7: 1570-1579
  Google Scholar
• 38. Montani F., Marzi M.J., Dezi F., Dama E.,Carletti R.M., Bonizzi G., Bertolotti R., Bellomi M., Rampinelli C., Maisonneuve P., Spaggiari L., Veronesi G., Nicassio F., Di Fiore P.P., Bianchi F.: miR-Test: a blood test for lung cancer early detection. J. Natl. Cancer. Inst., 2015; 107: djv063
  Google Scholar
• 39. Mozzoni P., Banda I., Goldoni M., Corradi M., Tiseo M., Acampa O., Balestra V., Ampollini L., Casalini A., Carbognani P., Mutti A.: Plasma and EBC microRNAs as early biomarkers of non-small-cell lung cancer. Biomarkers, 2013; 18: 679-686
  Google Scholar
• 40. Nowotwory płuca i opłucnej. http://onkologia.org.pl/nowotwory-pluca-oplucnej-tchawicy/(09.04.2016)
  Google Scholar
• 41. Patnaik S.K., Yendamuri S., Kannisto E., Kucharczuk J.C., Singhal S., Vachani A.: MicroRNA expression profiles of whole blood in lung adenocarcinoma. PLoS One, 2012; 7: e46045
  Google Scholar
• 42. Petriella D., De Summa S., Lacalamita R., Galetta D., Catino A., Logroscino A.F., Palumbo O., Carella M., Zito F.A., Simone G., Tommasi S.: miRNA profiling in serum and tissue samples to asses noninvasive biomarkers for NSCLC clinical outcome. Tumor Biol., 2016; 37: 5503-5513
  Google Scholar
• 43. Powrózek T., Krawczyk P., Kowalski D.M., Kuźnar-Kaminska B., Winiarczyk K., Olszyna-Serementa M., Batura-Gabryel H., Milanowski J.: Application of plasma circulating microRNA-448, 506, 4316, and 4478 analysis for non-invasive diagnosis of lung cancer. Tumor Biol., 2016; 37: 2049-2055
  Google Scholar
• 44. Powrózek T., Krawczyk P., Kowalski D.M., Winiarczyk K., Olszyna-Serementa M., Milanowski J.: Plasma circulating microRNA-944 and microRNA-3662 as potential histologic type-specific early lung cancer biomarkers. Transl. Res., 2015; 166: 315-323
  Google Scholar
• 45. Qi Z., Yang D.Y., Cao J.: Increased micro-RNA 17, 21, and 192 gene expressions improve early diagnosis in non-small cell lung cancer. Med. Oncol., 2014; 31: 195
  Google Scholar
• 46. Rabinowits G., Gercel-Taylor C., Day J.M., Taylor D.D., Kloecker G.H.: Exosomal microRNA: a diagnostic marker for lung cancer. Clin. Lung Cancer, 2009; 10: 42-46
  Google Scholar
• 47. Roa W.H., Kim J.O., Razzak R., Du H., Guo L., Singh R., Gazala S., Ghosh S., Wong E., Joy A.A, Xing J.Z., Bedard E.L.: Sputum microRNA profiling: a novel approach for the early detection of non-small cell lung cancer. Clin. Invest. Med., 2012; 35: E271-E281
  Google Scholar
• 48. Rossi G., Pelosi G., Barbareschi M., Graziano P., Cavazza A., Papotti M.: Subtyping non-small cell lung cancer: relevant issues and operative recommendations for the best pathology practice. Int. J. Surg. Pathol., 2013; 21: 326-336
  Google Scholar
• 49. Roth C., Stückrath I., Pantel K., Izbicki J.R., Tachezy M., Schwarzenbach H.: Low levels of cell-free circulating miR-361-3p and miR- 625* as blood-based markers for discriminating malignant from benign lung tumors. PLoS One, 2012; 7: e38248
  Google Scholar
• 50. Shen J., Liao J., Guarnera M.A., Fang H., Cai L., Stass S.A., Jiang F.: Analysis of microRNAs in sputum to improve computed tomography for lung cancer diagnosis. J. Thorac. Oncol., 2014; 9: 33-40
  Google Scholar
• 51. Shen J., Todd N.W., Zhang H., Yu L., Lingxiao X., Mei Y., Guarnera M., Liao J., Chou A., Lu C.L., Jiang Z., Fang H., Katz R.L., Jiang F.: Plasma microRNAs as potential biomarkers for non-small-cell lung cancer. Lab. Invest., 2011; 91: 579-587
  Google Scholar
• 52. Shen Y., Tang D., Yao R., Wang M., Wang Y., Yao Y., Li X., Zhang H.: microRNA expression profiles associated with survival, disease progression, and response to gefitinib in completely resected non-small-cell lung cancer with EGFR mutation. Med. Oncol., 2013; 30: 750
  Google Scholar
• 53. Shi S.B., Wang M., Tian J., Li R., Chang C.X., Qi J.L.: MicroRNA 25, microRNA 145, and microRNA 210 as biomarkers for predicting the efficacy of maintenance treatment with pemetrexed in lung adenocarcinoma patients who are negative for epidermal growth factor receptor mutations or anaplastic lymphoma kinase translocations. Transl. Res., 2016; 170: 1-7
  Google Scholar
• 54. ilva J., Garcia V., Zaballos A., Provencio M., Lombardia L., Almonacid L., Garcia J.M., Dominguez G., Peña C., Diaz R., Herrera M., Varela A., Bonilla F.: Vesicle-related microRNAs in plasma of nonsmall cell lung cancer patients and correlation with survival. Eur. Respir. J., 2011; 37: 617-623
  Google Scholar
• 55. Tang D., Shen Y., Wang M., Yang R., Wang Z., Sui A, Jiao W., Wang Y.: Identification of plasma microRNAs as novel noninvasive biomarkers for early detection of lung cancer. Eur. J. Cancer Prev., 2013; 22: 540-548
  Google Scholar
• 56. Turchinovich A., Samatov T.R., Tonevitsky A.G., Burwinkel B.: Circulating miRNAs: cell-cell communication function? Front. Genet., 2013; 4: 119
  Google Scholar
• 57. Turchinovich A., Weiz L., Langheinz A., Burwinkel B.: Characterization of extracellular circulating microRNA. Nucleic Acids Res., 2011; 39: 7223-7233
  Google Scholar
• 58. Ulivi P., Foschi G., Mengozzi M., Scarpi E., Silvestrini R., Amadori D., Zoli W.: Peripherial blood miR-328 expression as a potential biomarker for the early diagnosis of NSCLC. Int. J. Mol. Sci., 2013; 14: 10332-10342
  Google Scholar
• 59. Valadi H., Ekström K., Bossios A., Sjöstrand M., Lee J.J., Lötvall J.O.: Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nat. Cell Biol., 2007; 9: 654-659
  Google Scholar
• 60. Vickers K.C., Palmisano B.T., Shoucri B.M., Shamburek R.D., Remaley A.T.: MicroRNAs are transported in plasma and delivered to recipient cells by high-density lipoproteins. Nat. Cell Biol., 2011; 13: 423-433
  Google Scholar
• 61. Wang Q., Zhong M., Liu W., Li J., Huang J., Zheng L.: Alterations of microRNAs in cisplatin-resistant human non-small cell lung cancer cells (A549/DDP). Exp. Lung. Res., 2011; 37: 427-434
  Google Scholar
• 62. Wang R.J., Zheng Y.H., Wang P., Zhang J.Z.: Serum miR-125a-5p, miR-145 and miR-146a as diagnostic biomarkers in non-small cell lung cancer. Int. J. Clin. Exp. Pathol., 2015; 8: 765-771
  Google Scholar
• 63. Wang Y., Gu J., Roth J.A., Hildebrandt M.A., Lippman S.M., Ye Y., Minna J.D., Wu X.: Pathway-based serum microRNA profiling and survival in patients with advanced stage non-small cell lung cancer. Cancer Res., 2013; 73: 4801-4809
  Google Scholar
• 64. Weber J.A., Baxter D.H., Zhang S., Huang D.Y., Huang K.H., Lee M.J., Galas D.J., Wang K.: The microRNA spectrum in 12 body fluids. Clin. Chem., 2010; 56: 1733-1741
  Google Scholar
• 65. Wei J., Gao W., Zhu C.J., Liu Y.Q., Mei Z., Cheng T., Shu Y.Q.: Identification of plasma microRNA-21 as a biomarker for early detection and chemosensitivity of non-small cell lung cancer. Chin. J. Cancer, 2011; 30: 407-414
  Google Scholar
• 66. Wightman B., Ha I., Ruvkun G.: Posttranscriptional regulation of the heterochronic gene lin-14 by lin-4 mediates temporal pattern formation in C. elegans. Cell, 1993; 75: 855-862
  Google Scholar
• 67. Yang J.S., Li B.J., Lu H.W., Chen Y., Lu C., Zhu R.X., Liu S.H., Yi Q.T., Li J., Song C.H.: Serum miR-152, miR-148a, miR-148b, and miR-21 as novel biomarkers in non-small cell lung cancer screening. Tumor Biol., 2015; 36: 3035-3042
  Google Scholar
• 68. Yu L., Todd N.W., Xing L., Xie Y., Zhang H., Liu Z., Fang H., Zhang J., Katz R.L., Jiang F.: Early detection of lung adenocarcinoma in sputum by a panel of microRNA markers. Int. J. Cancer, 2010; 127: 2870-2878
  Google Scholar
• 69. Yuxia M., Zhennan T., Wei Z.: Circulating miR-125b is a novel biomarker for screening non-small-cell lung cancer and predicts poor prognosis. J. Cancer Res. Clin. Oncol., 2012; 138: 2045-2050
  Google Scholar
• 70. Zampetaki A., Willeit P., Drozdov I., Kiechl S., Mayr M.: Profiling of circulating microRNAs: from single biomarkers to re-wired networks. Cardiovasc. Res., 2012; 93: 555-562
  Google Scholar
• 71. Zen K., Zhang C.Y.: Circulating microRNAs: a novel class of biomarkers to diagnose and monitor human cancers. Med. Res. Rev., 2012; 32: 326-348
  Google Scholar
• 72. Zhao Q., Cao J., Wu Y.C., Liu X., Han J., Huang X.C., Jiang L.H., Hou X.X., Mao W.M., Ling Z.Q.: Circulating miRNAs is a potential marker for gefitinib sensitivity and correlation with EGFR mutational status in human lung cancers. Am. J. Cancer Res., 2015; 5: 1692-1705
  Google Scholar
• 73. Zhao W., Zhao J.J., Zhang L., Xu Q.F., Zhao Y.M., Shi X.Y., Xu A.G.: Serum miR-21 level: a potential diagnostic and prognostic biomarker for non-small cell lung cancer. Int. J. Clin. Exp. Med., 2015; 8: 14759-14763
  Google Scholar
• 74. Zheng D., Haddadin S., Wang Y., Gu L.Q., Perry M.C., Freter C.E., Wang M.X.: Plasma microRNAs as novel biomarkers for early detection of lung cancer. Int. J. Clin. Exp. Pathol., 2011; 4: 575-586
  Google Scholar
• 75. Zhu W., He J., Chen D., Zhang B., Xu L., Ma H., Liu X., Zhang Y., Le H.: Expression of miR-29c, miR-93, and miR-429 as potential biomarkers for detection of early stage non-small lung cancer. PLoS One, 2014; 9: e87780
  Google Scholar

Pełna treść artykułu