Abstrakt

Makrofagi pełnią istotne funkcje w odpowiedzi immunologicznej oraz w utrzymaniu homeostazy organizmu. Pełniąc funkcję komórek prezentujących antygen indukują lub hamują rozwój reakcji zapalnej, natomiast jako komórki efektorowe odgrywają ważną rolę we wrodzonej odporności przeciwzakaźnej oraz w nadwrażliwości typu późnego. Natomiast nadmierna lub zahamowana aktywacja makrofagów upośledza przebieg wielu procesów biologicznych, co może spowodować rozwój różnych schorzeń o podłożu immunologicznym, zapalnym, czy nowotworowym. Dlatego możliwość modulowania aktywności i zmiany właściwości makrofagów może być podstawą strategii terapeutycznych mających na celu wzmożenie (np. odpowiedź przeciwnowotworowa) lub wyhamowanie (np. odpowiedź autoimmunizacyjna, alergiczna, przeciwko tkankom przeszczepu) odpowiedzi immunologicznej. Należy zaznaczyć, iż oddziaływanie związków leczniczych na makrofagi może bezpośrednio mediować ich działanie terapeutyczne lub częściej jest dodatkowym działaniem zwiększającym skuteczność leczenia. Ponadto dojrzewanie makrofagów jest regulowane m.in. przez miRNA-223, natomiast ekspresja miRNA-146 oraz miRNA-155 zdaje się modulować i/lub wynikać z aktualnego fenotypu tych komórek. W pracy zebrano aktualną wiedzę dotyczącą roli leków, egzosomów i mikropęcherzyków oraz cząsteczek miRNA w modulacji aktywności makrofagów zaangażowanych w utrzymanie homeostazy organizmu, jak również w przebieg procesów chorobowych.

Wstęp

Makrofagi tkankowe, dzięki zdolności do fagocytozy, przygotowania i prezentacji antygenu, pełnią istotną rolę w odporności wrodzonej oraz w indukcji odpowiedzi nabytej. Biologiczne funkcje makrofagów mają znaczenie w utrzymaniu homeostazy organizmu, a ich dysregulacja zwykle zaburza równowagę ustroju. Ze względu na charakterystyczną dla makrofagów ekspresję szerokiego zakresu receptorów i cząsteczek sygnalizacyjnych, aktywność tych komórek podlega modulacji przez wiele czynników pochodzenia endo i egzogennego, co znamiennie wpływa na mediowane przez te komórki procesy w organizmie i może być podstawą nowych strategii terapeutycznych.

Istotną grupą czynników egzogennych modulujących aktywność makrofagów są związki o działaniu leczniczym, nie zawsze bezpośrednio związanym z regulacją procesów zapalnych. Obecnie ważną rolę w regulacji odpowiedzi immunologicznej przypisano także niskocząsteczkowym kwasom rybonukleinowym (RNA), w tym głównie cząsteczkom mikroRNA (miRNA), które często w ustroju są transportowane w mikropęcherzykach i/lub egzosomach.

W pracy zebrano aktualną wiedzę o wpływie leków oraz egzosomów i zawartych w nich cząsteczek, m.in. miRNA, na aktywność biologiczną makrofagów, które pełnią istotną rolę w wielu procesach immunologicznych, a także metabolicznych czy neuroendokrynnych.

Różnorodność funkcji makrofagów

Monocyty krwi obwodowej wywodzą się z komórek prekursorowych linii mieloidalnej różnicujących się z komórki macierzystej hematopoezy pod wpływem m.in. czynnika stymulującego tworzenie kolonii makrofagów (M-CSF) oraz czynnika stymulującego tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów (GM-CSF). Monocyty, po opuszczeniu światła naczynia w procesie diapedezy, różnicują w makrofagi tkankowe. Ponadto pewna część makrofagów rezydualnych pochodzi z komórek linii zarodkowej. Makrofagi charakteryzują się różnorodną aktywnością biologiczną, a ich aktualny fenotyp zależy od umiejscowienia tkankowego oraz sygnałów odbieranych z otaczającego mikrośrodowiska. W oparciu o różnice w mechanizmie aktywacji oraz w obrazie charakterystycznych markerów powierzchniowych i cytoplazmatycznych wyróżniono populację klasycznie (tzw. fenotyp M1) oraz alternatywnie (tzw. fenotyp M2) aktywowanych makrofagów. Makrofagi bezpośrednio zaangażowane w odpowiedź immunologiczną często wykazują tzw. fenotypy pośrednie, których aktywacja jest wynikiem adaptacji makrofagów do warunków otoczenia.

Indukcja klasycznie aktywowanego fenotypu makrofagów zachodzi pod wpływem interferonu gamma (IFN-γ) oraz ligandów bakteryjnych receptorów Toll-podobnych (TLR), przede wszystkim lipopolisacharydu (LPS) [76,77]. Populacja makrofagów M1 jest zaangażowana w odpowiedź zapalną związaną z infekcjami, a także z uszkodzeniem tkanek, reakcjami alergicznymi, autoimmunizacją, zespołem metabolicznym czy odrzucaniem przeszczepów. Ich aktywność jest również obserwowana w pierwszym etapie odpowiedzi immunologicznej skierowanej przeciwko nowotworom. W makrofagach M1 są aktywne wewnątrzkomórkowe szlaki sygnalizacji prozapalnej zależne m.in. od czynnika jądrowego NF-κB, co prowadzi do wydzielania wielu cytokin i mediatorów zapalenia. Pełnią także funkcję komórek prezentujących antygen (APC). Podczas ograniczania reakcji zapalnej, w procesach regeneracyjnych oraz w utrzymaniu homeostazy tkankowej obserwowana jest dominacja alternatywnej aktywacji makrofagów. Ponadto aktywność przeciwzapalna populacji makrofagów o fenotypie M2 towarzyszy rozwojowi tolerancji immunologicznej na nowotwór, przewlekłym zakażeniom oraz włóknieniu tkanek. Do indukcji fenotypu M2 w makrofagach dochodzi pod wpływem cytokin limfocytów Th2 (fenotyp M2a) oraz T regulatorowych i glikokortykosteroidów (fenotyp M2c), a także kompleksów immunologicznych, IL-1β i LPS (fenotyp M2b).

Różnorodność funkcji biologicznych makrofagów zaangażowanych w przebieg procesów fizjologicznych, a także w patomechanizm wielu schorzeń, niedawno przedstawiono [81]. Poszukiwanie związków wykazujących zdolność modulacji funkcji makrofagów może się przyczynić do wzrostu skuteczności terapii wielu schorzeń, którym towarzyszy nadmierna lub zahamowana aktywność tych komórek.

Substancje lecznicze w modulacji funkcji makrofagów

Makrofagi wykazują ekspresję receptorów, na które działają różnorodne substancje lecznicze, stosowane nie tylko jako leki regulujące reakcję zapalną, ale również takie, których działanie na makrofagi obecnie może być dodatkowym skutkiem i może się przyczynić do opracowania ich nowych zastosowań terapeutycznych.

Terapia schorzeń alergicznych

Immunosupresyjne działanie glikokortykosteroidów egzogennych, podobnie jak endogennych hormonów kortykosteroidowych, przez makrofagowy receptor glikokortykosteroidowy (GR) jest głównie wynikiem hamowania procesów transkrypcji i translacji genów dla cytokin prozapalnych [113]. Ponadto glikokortykosteroidy, przez regulację ekspresji genów dla napięciowozależnych kanałów potasowych, hamują proliferację makrofagów i wydzielanie cytokin prozapalnych [115]. Przeciwzapalne właściwości glikokortykosteroidów mogą być również związane ze wzmożoną syntezą reaktywnych form tlenu (ROIs) przez makrofagi, zaobserwowaną pod wpływem deksametazonu, która prowadzi do aktywacji limfocytów T regulatorowych [56], odpowiedzialnych za wyciszenie odpowiedzi immunologicznej. Proponuje się tak- że, iż zaburzona aktywność makrofagów płucnych może być przyczyną rozwoju ciężkiej postaci astmy związanej z opornością na leczenie glikokortykosteroidami [124].

W patomechanizmie astmy i alergii związanym z aktywacją immunofagocytozy makrofagów płucnych przez receptor dla fragmentu krystalizującego IgG (FcγR) występuje nadmierne wytwarzanie leukotrienów. Dlatego w terapii stanów alergicznych szerokie zastosowanie znalazły związki antagonizujące działanie leukotrienów (np. montelukast). Ponadto leki z tej grupy wykazują zdolność do hamowania fagocytozy i wytwarzania tlenku azotu (NO) oraz samych leukotrienów przez makrofagi pęcherzyków płucnych [104], co może wzmagać działanie terapeutyczne. Jednak w eksperymentalnym modelu astmy zaobserwowano związany ze stosowaniem antagonistów leukotrienów wzrost podatności na zakażenia patogenami dróg oddechowych [104]. Klemastyna i desloratadyna, przedstawiciele leków przeciwhistaminowych, mają zdolność do hamowania aktywności prozapalnej mysich makrofagów w przebiegu listeriozy, indukując stan immunosupresji podobny do obserwowanego w leczeniu związkami steroidowymi [51]. Stosowanie leków przeciwhistaminowych, które również obniżają zdolność makrofagów do syntezy ROIs i tlenku azotu, może doprowadzić do osłabienia odpowiedzi przeciwzakaźnej [72]. Niemniej jednak obserwowana w modelu posocznicy u myszy zdolność związków o działaniu antyhistaminowym do hamowania wytwarzania TNF-α w ludzkich i mysich makrofagach może pozwolić na potencjalne zastosowanie ich w leczeniu ogólnoustrojowej reakcji zapalnej [51]. Stabilizatory błony bazofilów i mastocytów (kromoglikan sodowy, doksantrazol), stosowane w leczeniu astmy i alergii, znacznie obniżają zdolność makrofagów płucnych do syntezy ROIs. Skutki ich działania, przez złagodzenie stresu oksydacyjnego towarzyszącego astmie, zmniejszają prawdopodobnie ryzyko uszkodzenia dróg oddechowych [95], choć także mogą zaburzać odporność przeciwzakaźną. Również ambroksol, mukolityk stosowany jako lek wykrztuśny, wykazuje zależne od dawki hamowanie wytwarzania ROIs przez makrofagi izolowane z popłuczyn pęcherzykowo-oskrzelowych świnki morskiej [111]. W badaniach eksperymentalnych wykazano także, iż inhibitory konwertazy angiotensynowej (ACEI) mają zdolność hamowania wytwarzania ROIs przez makrofagi pęcherzykowe pobrane od szczurów i świnek morskich. Dawka leku potrzebna do wywołania efektu jest niższa w przypadku ACEI, które w cząsteczce zawierają grupę tiolową (-SH) [110]. Formoterol i salmeterol, β-adrenomimetyki stosowane w leczeniu astmy, mają zdolność hamowania wytwarzania cytokin prozapalnych (TNF-α, IL-1β, IL-6) oraz GM-CSF w hodowlach ludzkich makrofagów pochodzenia monocytarnego. Zastosowanie wspomnianych adrenomimetyków wraz z budezonidem skutkuje addytywnym działaniem prowadzącym do indukcji przeciwzapalnego fenotypu makrofagów [30]. Leki te wykazują zatem dodatkowy przeciwzapalny mechanizm działania terapeutycznego.

Terapia schorzeń z towarzyszącą reakcją zapalną

W patomechanizmie schorzeń metabolicznych istotną rolę odgrywa przewlekły stan zapalny. Badania wskazują, iż pewne grupy leków stosowanych w terapii tych schorzeń również wykazują działanie przeciwzapalne, co może podnieść skuteczność leczenia. Sygnalizacja poprzez receptory PPARγ moduluje metabolizm lipidów i węglowodanów, jak również syntezę cytokin prozapalnych [86]. Terapia chorych z cukrzycą z zastosowaniem agonistów receptorów PPARγ, np. tiazolidynodionu, podnosi insulinowrażliwość komórek, a także hamuje towarzyszącą reakcję zapalną [136]. Telmisartan, bloker receptorów typu 1 dla angiotensyny II (AT1) pierwotnie stosowany w leczeniu nadciśnienia tętniczego, jest pozbawiony kardiotoksycznego działania pełnych agonistów PPARγ, natomiast wykazuje podobne właściwości przeciwzapalne. W hodowanych ludzkich monocytach aktywowanych LPS telmisartan znacznie obniża wytwarzanie cytokin prozapalnych, PGE2 , ROIs oraz aktywność szlaku sygnalizacyjnego zależnego od czynnika NF-κB. Zastosowany w hodowli komórek linii THP-1 obniża także indukowaną LPS sekrecję TNF-α i białka chemotaktycznego monocytów (MCP-1) oraz ekspresję receptora dla utlenionej postaci LDL (oxLDL) [86]. Stosowanie telmisartanu dodatkowo wzmaga ekspresję markerów fenotypu M2, przede wszystkim CD163, CD209 oraz makrofagowej galaktozo-N- -acetylogalaktozaminowoswoistej lektyny (Mgl2), a także hamuje wytwarzanie TNF-α przez makrofagi [37]. Przeciwzapalne działanie telmisartanu jest blokowane przez działanie antagonistów PPARγ, co zdaje się potwierdzać, iż jest skutkiem pobudzenia tych receptorów [86]. Duża dawka telmisartanu wzmaga in vivo oraz w hodowli in vitro ekspresję PPARγ na ludzkich monocytach wyizolowanych od osób z zespołem metabolicznym. Ponadto aktywuje transportery cholesterolu, co może się przyczyniać do usuwania go z makrofagów obecnych w zmianach miaż- dżycowych, choć pod wpływem telmisartanu zaobserwowano również wzmożoną ekspresję CD36, receptora zmiatacza dla oxLDL [8]. Natomiast leki ze wspomnianej wcześniej grupy ACEI wykazały zdolność do hamowania tworzenia komórek piankowatych w hodowli linii komó- rek makrofagowych THP-1 stymulowanych oxLDL [55], a także do stabilizowania blaszki miażdżycowej w eksperymentalnym modelu miażdżycy [46].

Olmesartan, przedstawiciel leków z grupy blokerów receptora AT1, ma zdolność do hamowania prozapalnych właściwości makrofagów wyrażoną w warunkach hodowlanych przez obniżenie syntezy ROIs, IL-1β i makrofagowego białka zapalnego-2 (MIP-2), jak również in vivo przez złagodzenie stresu oksydacyjnego w ścianie naczyń krwionośnych u myszy knock-out dla apolipoproteiny E (ApoE-/-) [99]. U myszy ApoE-/- traktowanych olmesartanem zaobserwowano również obniżenie liczby makrofagów w naczyniowych zmianach miażdżycowych oraz stężenia cytokin prozapalnych w surowicy [25]. Ponadto olmesartan hamuje aktywność metaloproteinaz macierzy (MMP) oraz zdolność do aktywacji makrofagów przez ligandy receptorów TLR2 i TLR4 [25]. Angiotensyna II przez działanie na receptory AT1 na makrofagach indukuje oksydazę NADPH i wytwarzanie ROIs. Efekt ten może być zahamowany przez działanie olmesartanu [99]. Podobne działanie przeciwzapalne wykazuje kandesartan, który w hodowanych in vitro ludzkich monocytach obniża indukowaną LPS ekspresję CD14, wytwarzanie TNF-α, IL- 1β, IL-6 i ROIs oraz aktywność czynnika NF-κB [63]. Korzystne działanie przeciwzapalne tej grupy leków wykazano także w badaniach populacyjnych. U osób przewlekle stosujących losartan stwierdzono w osoczu stężenia metabolitów wystarczające do aktywacji monocytarnego/ makrofagowego PPARγ, co przyniosło dodatkowe korzyści terapeutyczne, oprócz tych, które bezpośrednio wynikają z blokady receptora AT1. Zaobserwowano również, iż podawanie losartanu istotnie zmniejszyło liczbę nowych przypadków cukrzycy niezależnie od obniżenia poziomu ciśnienia krwi wśród osób leczonych losartanem z powodu nadciśnienia [53].

Modulacja aktywności receptorów PPARγ może mieć znaczenie także w terapii innych schorzeń. Monocyty izolowane z krwi obwodowej osób chorych na reumatoidalne zapalenie stawów, a także makrofagi różnicujące się z monocytów, wykazują istotnie wzmożoną ekspresję PPARγ w odniesieniu do monocytów osób zdrowych. Zaproponowano, iż ekspresja PPARγ, która jest skorelowana ze stopniem zaawansowania choroby, może być jego wskaźnikiem, jak również kryterium oceny odpowiedzi na leczenie. Terapeutyczne dawki metotreksatu i metyloprednizonu wzmagały in vitro ekspresję PPARγ i hamowały indukowane LPS wytwarzanie metaloproteinazy MMP9. W eksperymentalnych modelach zapalenia stawów stwierdzono działanie przeciwzapalne agonistów PPARγ (np. tiazolidynodion czy rozyglitazon, stosowane pierwotnie w cukrzycy) wyrażone przez wzmożenie ekspresji markerów fenotypu M2 na makrofagach. Skutki były podobne do obserwowanych w terapii glikokortykosteroidami. Ponadto indometacyna (przedstawiciel grupy niesteroidowych leków przeciwzapalnych o najsilniejszym działaniu) oraz statyny zastosowane w wysokich stężeniach wykazują agonistyczne działanie na receptory PPARγ [85].

Stosowanie agonistów receptora β3-adrenergicznego w odchudzaniu, przez aktywację lipolizy zmagazynowanych triglicerydów, wzmagało rekrutację makrofagów do tkanki tłuszczowej [21], co prowadziło do indukcji stanu zapalnego towarzyszącego otyłości, zespołowi metabolicznemu i miażdżycy. Natomiast karwedilol, β1 -bloker, hamuje akumulację makrofagów w zmianach miażdżycowych u myszy ApoE-/-, podobnie jak metoprolol i propranolol, ale dodatkowo hamuje powstawanie ROIs w ścianie naczynia, których głównymi producentami zdają się być makrofagi [98]. Również N-acetylocysteina, stosowana u ludzi w napadowych bólach wieńcowych przy rozwiniętej tolerancji na nitraty, u myszy ApoE-/- łagodzi przebieg miażdżycy naczyń, m.in. przez obniżenie wytwarzania ROIs i akumulacji makrofagów w blaszce miażdżycowej [100]. Stosowanie terutrobanu, leku przeciwzakrzepowego nowej generacji, który hamuje sygnalizację przez receptor tromboksanu, prowadzi do rozwoju bardzo stabilnej postaci blaszki miażdżycowej, prawdopodobnie poprzez hamowanie ekspresji molekuł adhezyjnych na makrofagach [28]. Może to mieć znaczenie w stabilizacji blaszki u osób dotkniętych miażdżycą naczyń.

Związek stosowany jako donor NO, molsydomina, wykazuje pozytywne skutki terapii dystrofii mięśniowej bezpośrednio hamując uszkodzenie tkanki związane z niedoborem NO, a pośrednio przez promowanie nacieku makrofagów o fenotypie M2, które uczestniczą w naprawie uszkodzeń tkanki mięśni [135]. Podjęto próby zastosowania chlorowodorku efedryny w terapii stanów septycznych. W mysim modelu zapalenia otrzewnej indukowanym podaniem peptydoglikanu efedryna wykazała właściwości immunomodulujące, związane z promowaniem wytwarzania IL-10 przez makrofagi otrzewnowe, wraz ze znacznym obniżeniem ich zdolności do wytwarzania cytokin prozapalnych [128].

Leki w terapii nowotworów

Istotne znaczenie ma poszukiwanie nowych strategii terapii nowotworów, m.in. w oparciu o mechanizmy modulacji aktywności komórek immunologicznych. Cyklofosfamid, jako związek o właściwościach alkilujących, w dawce 2 mg/kg masy ciała lub większej u ludzi jest stosowany w onkologii, reakcji przeszczep przeciw gospodarzowi czy chorobach autoimmunizacyjnych. W dawce 20-100 mg/kg masy ciała u myszy (poniżej 2 mg/kg masy ciała człowieka) wykazuje natomiast właściwości immunoregulacyjne. Moduluje przebieg reakcji immunologicznych działając cytotoksycznie na aktywowane i proliferujące populacje komórek zaangażowanych w odpowiedź zapalną. Mała dawka cyklofosfamidu u myszy aktywuje prozapalny fenotyp makrofagów ze znacznym wytwarzaniem cytokin prozapalnych (IL-6, IL-12, TNF-α) oraz ekspresją molekuł kostymulujących prezentację antygenu i markerów fagocytozy, a także obniżonym wytwarzaniem cytokin przeciwzapalnych. Ponadto małe dawki cyklofosfamidu znoszą supresyjną aktywność makrofagów znakowanych haptenem mediowaną przez IL-10 w ich dożylnym transferze. Makrofagi izolowane od myszy traktowanych małą dawką cyklofosfamidu wytwarzały istotnie większe ilości ROIs w porównaniu do makrofagów kontrolnych. Podawanie małych dawek cyklofosfamidu może zatem korzystnie wpływać na aktywację odpowiedzi przeciwnowotworowej i  reedukację makrofagów związanych z guzem wraz z przełączeniem ich fenotypu do M1 [15,17]. Wcześniej stwierdzono, iż cyklofosfamid jest zdolny do hamowania aktywności przeciwzapalnej populacji makrofagów, a nie wpływa na populację makrofagów wykazującą fenotyp prozapalny [74].

Wzrost skuteczności terapii przeciwnowotworowej z wykorzystaniem przeciwciał monoklonalnych obserwuje się przy zastosowaniu agonistów receptorów TLR (m.in. TLR7 i TLR8), dzięki ich zdolności do wzmożenia ekspresji FcγR na makrofagach naciekających guz [19]. Łączona terapia cyklofosfamidem oraz przeciwciałami monoklonalnymi αCD40 z CpG (ligand TLR) zmienia fenotyp makrofagów w guzie na M1, co istotnie wzmaga działanie przeciwnowotworowe [52]. Eksperymentalna terapia z zastosowaniem przeciwciał monoklonalnych αCD40 z CpG poprzedzona terapią łączoną VCD (winkrystyna, cyklofosfamid, doksorubicyna) u myszy prowadzi do reedukacji makrofagów z indukcją prozapalnego fenotypu M1 oraz wytwarzaniem IL-12 i NO [18]. Bestatyna, krótkołańcuchowy dipeptyd o właściwościach przeciwnowotworowych i immunomodulujących, w dawkach terapeutycznych wzmaga wytwarzanie IL-1β w makrofagach stymulowanych in vitro LPS. Ponadto znosi hamowanie wybuchu tlenowego makrofagów obserwowane pod wpływem immunosupresyjnych dawek cyklofosfamidu i wzmaga działanie cytotoksyczne makrofagów. Natomiast w dawkach podprogowych bestatyna hamuje wytwarzanie cytokin prozapalnych i chemokin, a wzmaga wytwarzanie IL-10 oraz czynników wzrostu, pośrednio modulując hematopoezę [70].

Stosowanie inhibitorów receptorów dla czynników wzrostowych VEGF (sorafenib) w terapii nowotworu wątrobowokomórkowego nie przyniosło oczekiwanego skutku terapeutycznego i jednocześnie promowało powstawanie przerzutów. Wykazano, iż za wzmożenie zdolności nowotworu do tworzenia przerzutów odpowiedzialne było zahamowanie tworzenia IL-12b przez makrofagi pod wpływem inhibitorów angiogenezy [132]. Natomiast częstym powikłaniem terapii nowotworów bisfosfonianami jest destrukcja kości, m.in. w obrębie szczęki. Stwierdzono, że aktywacja pod wpływem IL-17 makrofagów o fenotypie M1 koreluje z natężeniem zmian chorobowych [126].

Leki w terapii schorzeń neuropsychiatrycznych i leczeniu bólu

Działanie na makrofagi wykazują również leki stosowane w leczeniu silnego bólu, chorób neurologicznych i zaburzeń emocjonalnych. Mysie makrofagi izolowane od dawców traktowanych in vivo morfiną, fentanylem i metadonem wykazują wzmożone wytwarzanie ROIs, a także obniżoną ekspresję powierzchniowych molekuł kostymulujących wraz ze zmniejszoną zdolnością do prezentacji antygenu w odpowiedzi humoralnej. Ponadto morfina i metadon aktywują fazę indukcji nadwrażliwości kontaktowej u myszy oraz wzmagają wytwarzanie IL-6 i TNF-α przez makrofagi stymulowane LPS. W fazie efektorowej metadon, w przeciwieństwie do morfiny, łagodzi objawy reakcji nadwrażliwości kontaktowej [34]. Natomiast w warunkach in vitro morfina hamuje chemotaksję, fagocytozę i wybuch tlenowy monocytów/makrofagów oraz indukuje apoptozę makrofagów i komórek mikrogleju [117].

Makrofagi dzięki ekspresji receptorów i białek dopaminergicznych mogą podlegać regulacji przez działanie dopaminy. Zbyt duże stężenie dopaminy utrzymujące się w centralnym systemie nerwowym w wyniku nadużywania leków może zaostrzać przebieg chorób neurologicznych w związku z zaburzeniem funkcji przeciwzapalnej makrofagów infiltrujących przez barierę krew-mózg [41]. Makrofagi wykazują również ekspresję receptorów benzodiazepinowych. Udowodniono, iż diazepam hamuje fagocytozę i aktywność mikrobójczą makrofagów oraz ich zdolność do wytwarzania cytokin. Stosowanie benzodiazepin u pacjentów z migreną i fobiami lękowymi może doprowadzić do upośledzenia odporności, a u osób z wyjściowo obniżoną odpornością może pogłębiać stan immunosupresji i spowodować rozwój ciężkich zakażeń [26].

W piśmiennictwie przedstawiono tzw. makrofagową teorię depresji, według której jedną z istotnych przyczyn jej rozwoju jest przewlekła aktywacja zapalna makrofagów. U osób chorujących na depresję zaobserwowano spadek wrażliwości receptorów na działanie glikokortykosteroidów endogennych i egzogennych, który wywołuje aktywację zapalną komórek odporności, w tym makrofagów i mikrogleju [67], co prowadzi do rozwoju pętli zapalnej pogłębiającej objawy depresji. Stosowany w terapii depresji lit w hodowli in vitro aktywuje fagocytozę makrofagów [69], a produkt degradacji tryptofanu, kwas pikolinowy, wzmaga aktywność prozapalną mysich makrofagów wyrażoną wzrostem syntezy cytokin prozapalnych oraz tlenku azotu [93]. Kwas pikolinowy aktywuje także wytwarzanie chemokin, w tym MIP [14]. Działanie tych substancji może zatem pogłębiać stan zapalny. Natomiast leki z grupy antydepresantów in vitro hamują syntezę IL-1, IL-6, TNF-α przez makrofagi. Uważa się, iż trójcykliczne leki przeciwdepresyjne mogą prawdopodobnie hamować wytwarzanie cytokin przez modulację szlaku zależnego od cAMP [67]. Trifluoperazyna, z grupy fenotiazyn stosowana jako lek przeciwpsychotyczny, działa antagonistycznie do kalmoduliny. Stwierdzono, że ma zdolność do akumulacji w makrofagach oraz wykazuje efektywne działanie przeciwbakteryjne. Trifluoperazyna w makrofagach zakażonych Mycobacterium tuberculosis ogranicza zdolność do namnażania się bakterii m.in. przez blokowanie aktywności białka podobnego do kalmoduliny w komórce drobnoustroju [1]. Należy podkreślić, iż działanie to było skuteczne w kwaśnym pH, charakterystycznym dla środowiska fagolizosomów.

Substancje pochodzenia naturalnego oraz obecnie badane związki

Niektóre z  substancji pochodzenia naturalnego także zdają się wykazywać działanie lecznicze przez modulację funkcji makrofagów. W przebiegu choroby Alzheimera makrofagi pochodzące z monocytów krwi obwodowej, które infiltrują tkankę nerwową centralnego systemu nerwowego, wykazują upośledzoną zdolność do usuwania złogów amyloidu-β i jego transportu do endosomów i lizosomów, a także obniżoną ekspresję genów dla TLR i 4-β-N-acetyloglukozaminotransferazy-3. Stosowanie naturalnych kurkuminoidów, przede wszystkim bisdemetoksykurkuminy, podnosiło efektywność pochłaniania amyloidu-β przez makrofagi oraz przywracało właściwą ekspresję wspomnianych białek [20,33]. Frakcja n-heksanowa ekstraktu z alg Laminaria japonica hamuje w makrofagach indukowanych LPS wytwarzanie NO i PGE2 wraz z ekspresją iNOS oraz COX-2. Poprzez ujemne oddziaływanie na szlak NF-κB hamuje także sekrecję TNF-α, IL-1β i IL-6. Wobec tego może być uważana za potencjalny naturalny składnik spożywczy o właściwościach przeciwzapalnych [66]. Podobnie resweratrol, inhibitor proteasomów, przeciwzapalny związek obecny w składnikach diety śródziemnomorskiej, hamuje wytwarzanie NO i cytokin prozapalnych w makrofagach stymulowanych LPS [91].

Mykoepoksydien izolowany z  grzybów Diaporthe spp. ma zdolność hamowania różnicowania makrofagów do osteoklastów zależnego od ligandu receptora aktywującego jądrowy czynnik kappa B (RANKL). Związek ten nie wykazuje toksyczności względem komórek. U myszy hamuje osteoporozę wywołaną zmianami hormonalnymi po usunięciu jajników [131]. Polifenole zawarte m.in. w czerwonym winie czy zielonej herbacie, a szczególnie galusan epigallokatechiny, wykazują działanie przeciwnowotworowe, pośrednio dzięki swoim właściwościom antyoksydacyjnym, a bezpośrednio przez hamowanie aktywności telomerazy w komórkach nowotworowych. Niedawno wykazano również, iż galusan epigallokatechiny może hamować osteoklastogenezę indukowaną in vitro RANKL, a także destrukcję kości indukowaną in vivo działaniem IL-1 [65]. Może to mieć znaczenie w prewencji zmian osteoporotycznych towarzyszących stanom zapalnym np. w przebiegu chorób autoimmunizacyjnych stawów.

Wybrane związki i czynniki, których mechanizmy działania terapeutycznego są dopiero poznawane w badaniach eksperymentalnych i przedklinicznych, również wykazują zdolność do modulacji funkcji makrofagów. Przebieg reakcji zapalnej w chorobie Leśniowskiego-Crohna i reumatoidalnym zapaleniu stawów jest istotnie łagodzony w wyniku eksperymentalnego zastosowania antagonistów kinazy serynowo-treoninowej TPL-2 [39]. Podstawę nowej strategii terapeutycznej w reumatoidalnym zapaleniu stawów może stanowić również blokada sygnalizacji przez receptor dla IL-21, która w mysim modelu reumatoidalnego zapalenia stawów bezpośrednio indukuje RANKL i osteoklastogenezę, zaostrzając przebieg zapalenia stawów i ich degradację [60]. Nowo syntetyzowane pochodne pirydynowo-imidazolowe mogą znaleźć potencjalne zastosowanie jako leki przeciwzapalne ze względu na aktywność hamowania wytwarzania cytokin prozapalnych. W hodowlach makrofagów stymulowanych LPS pochodne te w  sposób istotny obniżały wydzielanie IL-6 i TNF-α, a także PGE2 poprzez hamowanie aktywności COX-2 [114]. Niedawno przeprowadzono badania mechanizmu przeciwzapalnego działania pelubiprofenu, analogu ibuprofenu, na makrofagach aktywowanych LPS. Zaobserwowano obniżenie wytwarzania PGE2 , TNF-α, IL-1β i IL-6 oraz ekspresji iNOS w makrofagach, nie tylko w wyniku hamowania aktywności COX, ale również szlaku NF-κB, co jest dodatkową właściwością wybranych związków z grupy niesteroidowych leków przeciwzapalnych [101].

Inhibitory α4-integryny wprowadzono do etapu badań klinicznych nad zastosowaniem ich w chorobach przebiegających z masywnym naciekiem leukocytarnym. Związki te zdają się również hamować sygnalizację między naczyniową molekułą adhezyjną VCAM-1 obecną na komórkach nowotworowych a α4-integryną na makrofagach, której istotne znaczenie wykazano w promowaniu przerzutowania nowotworu piersi zależnym od makrofagów [22]. Ekspresja VCAM-1 na komórkach nowotworu piersi ułatwia przerzutowanie do tkanek bogatych w leukocyty, w tym do płuc [23], jak również ekspansję osteoklastów w mikroprzerzutach nowotworu piersi do kości [73]. Pozytywna sygnalizacja między komórkami guza a makrofagami przez wspomniane molekuły adhezyjne stymuluje prze- życie przerzutujących komórek [23], dlatego możliwość jej zablokowania potencjalnie może hamować zdolność nowotworu do tworzenia przerzutów.

Aktywność makrofagów a niepożądane działanie leków

Aktywność makrofagów może indukować lub potęgować toksyczne działanie związków leczniczych. Uszkodzenie wątroby w wyniku zatrucia paracetamolem może być mediowane przez cytokiny prozapalne wydzielane przez komórki Browicza-Kupffera [134] oraz makrofagi infiltrujące zmienioną zapalnie tkankę wątroby. Farmakologiczne zablokowanie działania chemokiny MCP-1 zmniejsza naciek zapalny makrofagów obserwowany m.in. w przewlekłej niewydolności wątroby [7]. Wiązanie cząsteczek leków z błoną erytrocytów prowadzi często do aktywacji procesu fagocytozy przez makrofagi, co może skrócić czas życia krwinek czerwonych, a także spowodować rozwój anemii autoimmunohemolitycznej związanej z wytwarzaniem swoistych przeciwciał [40].

Sposób dostarczenia leków do komórek w istotny sposób wpływa na wzrost skuteczności terapii i  ograniczanie jej działań niepożądanych. Dostarczenie leków przeciwpaso- żytniczych (doksorubicyny, mitomycyny C) związanych z biodegradowalnymi polimerycznymi nanocząsteczkami do mysich makrofagów zakażonych Leishmania spp. wydłużało czas uwalniania tych leków i obniżało ich toksyczność ogólnoustrojową, co wzmaga efektywność i bezpieczeństwo terapii. Ponadto nanocząsteczki wydają się bardziej wydajne od liposomów i są degradowane w komórce, gdyż wchodzą w cykl kwasu cytrynowego [102].

Aktywowane makrofagi wykazują ekspresję receptora dla folianów, uważanego za jeden z markerów fenotypu M1. Leki skoniugowane z folianami są na etapie badań klinicznych. Interakcja folianów z receptorem może znacznie usprawnić dostarczenie skoniugowanych z nimi leków do komórek wykazujących ekspresję receptora. Ponadto obecność receptorów dla folianów pozwala na diagnostyczne obrazowanie skupisk makrofagów m.in. aktywowanych makrofagów synowialnych u osób chorych na reumatoidalne zapalenie stawów [120]. Cząsteczka CD163, jako jeden z makrofagowych receptorów zmiataczy i marker aktywacji fagocytarnej makrofagów, stanowi interesujący cel dla działań w kierunku wzmożenia efektywności terapii lekami przeciwzapalnymi. W badaniach eksperymentalnych podanie deksametazonu z przeciwciałami monoklonalnymi (mAb) anty-CD163 istotnie wzmagało efektywność pobierania leku przez makrofagi i pośrednio przyczyniało się do obniżenia działań niepożądanych terapii steroidami [32].

Rola miRNA i egzosomów w modulacji aktywności makrofagów

W ostatnich latach dostrzeżono udział różnorodnych mikropęcherzyków w transmisji cząsteczek sygnalizacyjnych (mikroRNA, mRNA, białek), które są zaangażowane w modulację wielu procesów toczących się w organizmie, w tym w regulację reakcji immunologicznych. Opisano również znaczący udział mechanizmu interferencji RNA w immunoregulacji [103]. Egzosomy wydzielane w wyniku egzocytozy przez większość komórek organizmu często zawierają cząsteczki mikroRNA (miRNA), które po dostarczeniu do komórek docelowych regulują ekspresję genów przez interferencję w procesy ich transkrypcji i translacji. Spośród komórek immunokompetentnych, również aktywność makrofagów może być modulowana i mediowana przez miRNA oraz egzosomy.

Rola egzosomów i miRNA w dojrzewaniu oraz aktywacji fenotypu makrofagów

Wykazano, że egzosomy zawierające krótkoniciowe RNA, wydzielane do osocza, śliny oraz kobiecego mleka są aktywnie pobierane przez makrofagi [64]. Stwierdzono tak- że, iż monocyty i makrofagi mają zdolność do wydzielania mikropęcherzyków i egzosomów zawierających cząsteczki miRNA [2]. Wyniki wielu badań przyczyniają się do odkrywania nowych cząsteczek miRNA oraz ich funkcji. Szacuje się, że ekspresja 30-90% ludzkich genów jest regulowana w mechanizmie interferencji cząsteczek miRNA [87]. Dojrzewanie i różnicowanie monocytów jest regulowane m.in. przez cząsteczki miRNA-17-5p, miRNA-20a oraz miRNA- -106a, które modulują ekspresję genów czynnika transkrypcyjnego AML1 oraz receptora M-CSF [36]. Cząsteczka miRNA-424 także indukuje wzrost ekspresji receptora M-CSF, co aktywuje proces różnicowania mieloidalnych komórek prekursorowych do monocytów, które następnie wędrują ze szpiku kostnego do krwi obwodowej [87]. Podczas różnicowania monocytów do makrofagów pod wpływem M-CSF dochodzi do obniżenia ekspresji miRNA-142-3p, co wiąże się ze wzrostem aktywności czynnika transkrypcyjnego Egr2 (early growth response 2) [61]. Ponadto makrofagi przez wydzielanie mikropęcherzyków transportujących miRNA, mogą odpowiadać za indukcję różnicowania naiwnych monocytów. Ten mechanizm aktywacji dojrzewania monocytów prawdopodobnie zależy od miRNA-223 [48]. Inne badania dowodzą natomiast, iż miRNA-223 hamuje ekspresję genu NLRP3 kodującego białko zaangażowane w utrzymanie homeostazy wewnątrzkomórkowej, co w ludzkich komórkach monocytarnych hodowanych in vitro skutkowa- ło zablokowaniem procesu różnicowania do makrofagów [43]. W czasie różnicowania monocytów do makrofagów zaobserwowano również ekspresję cząsteczek miRNA-29b, miRNA-146a, miRNA-155, miRNA-193b oraz miRNA-222. W makrofagach o fenotypie M1 wykazano ekspresję miRNA-125a, miRNA-155 oraz miRNA-26a, w makrofagach o fenotypie M2a miRNA-193b, natomiast w makrofagach fenotypu M2b miRNA-27a, miRNA-29b, miRNA-132, miRNA-155 i miRNA-222 [42]. Indukowana pod wpływem IL-4 aktywność miRNA-378-3p moduluje przekaźnictwo sygnałów w szlaku sygnalizacyjnym czynnika Akt odpowiedzialnym między innymi za regulację proliferacji i alternatywnej aktywacji makrofagów [94]. Również miRNA let-7c moduluje aktywność fagocytarną i polaryzację makrofagów, promując przeciwzapalny fenotyp M2 [10]. Znaczenie tych cząsteczek miRNA w modulacji aktywności makrofagów jeszcze nie zostało dokładnie poznane i jest przedmiotem wielu badań.

Pionierskie badania nad znaczeniem regulacji odporności wrodzonej mediowanej przez cząsteczki miRNA dotyczyły ludzkiej linii monocytarnej THP-1, w której wykazano indukowaną przez LPS ekspresję miRNA-146, miRNA-132 oraz miRNA-155. Następnie opisana została ekspresja cząsteczek miRNA odpowiedzialnych za regulację wydzielania TNF-α (miRNA-16, miRNA-125b, miRNA-155, miRNA-221, miRNA-579) oraz modulujących aktywność szlaku sygnalizacji receptora TLR4 (let-7i, miRNA-223). Dalsze badania umoż- liwiły zidentyfikowanie cząsteczki miRNA odpowiedzialnej za zahamowanie aktywności zapalnej komórek odporności wrodzonej (miRNA-146, miRNA-147, miRNA-9, miRNA-21) [125]. Ponadto komórki linii THP-1 mają zdolność wydzielania egzosomów zawierających miRNA-150 [122], jednak ich znaczenie nie zostało jak dotąd określone.

Cząsteczki miRNA, które wpływają na proces aktywacji makrofagów, modulują przebieg reakcji zapalnej. Ekspresja miRNA-155 aktywuje w makrofagach fenotyp M1 i jednocześnie blokuje możliwość indukcji fenotypu M2 przez obniżenie ekspresji receptora IL-13 [87], hamowanie sygnalizacji przez receptor IL-13 [94] i zahamowanie odpowiedzi makrofagów na TGF-β [87]. Ekspresja miRNA-101 aktywuje wydzielanie przez makrofagi M1 cytokin prozapalnych, a miRNA-125 wzmaga w makrofagach odpowiedź na IFN-γ i ekspresję markerów charakterystycznych dla APC [87]. Jednocześnie dojrzała postać miRNA-125b-5p hamuje wytwarzanie TNF-α przez makrofagi [94]. Natomiast miRNA-146, indukowane w makrofagach przez pobudzenie receptorów TLR2, TLR4 i TLR5 [38], redukuje aktywność makrofagów M1 [87], a dojrzała cząsteczka miRNA-146a- -5p na zasadzie ujemnego sprzężenia zwrotnego hamuje nadmierną reakcję zapalną [94]. miRNA-146 wykazuje również działanie tolerogenne przez obniżanie w makrofagach wytwarzania cytokin prozapalnych (TNF-α, IL-1β oraz IL-6) [47] oraz jest negatywnym regulatorem sygnalizacji indukowanej przez ligandy receptorów TLR [109]. Stymulacja TLR4 w makrofagach indukuje także ekspresję miRNA-147, zaangażowanego w hamowanie nadmiernej reakcji zapalnej w mechanizmie sprzężenia zwrotnego ujemnego [71]. Sugeruje się, że również miRNA-203 może regulować odpowiedź makrofagów na aktywację TLR przez obniżenie ekspresji białka adaptorowego MyD88 [118]. Natomiast miRNA-21 wzmaga funkcje przeciwzapalne makrofagów przez blokowanie działania inhibitora syntezy IL-10 [87]. LPS hamuje w makrofagach ekspresję miRNA-34a, który wykazuje dzia- łanie przeciwzapalne przez modulację wytwarzania cytokin [50]. Nowo odkryte u myszy miRNA mmu-ca-65 działa jako negatywny regulator odpowiedzi immunologicznej, a jego ekspresja w makrofagach jest indukowana różnymi ligandami receptorów TLR w sposób zależny od NF-κB. W wyniku blokowania działania czynnika transkrypcyjnego aktywującego szlak NF-κB przez mmu-ca-65, hamowane jest wydzielanie cytokin prozapalnych, w tym TNF-α i IL-6, przez makrofagi [125]. Aktywność tego miRNA jest prawdopodobnie istotnym elementem pętli ujemnego sprzężenia zwrotnego, którego celem jest wygaszenie aktywnego procesu zapalnego. Odpowiednia regulacja ekspresji cząsteczek miRNA w komórkach immunokompetentnych, w tym w makrofagach, może się przyczynić do opracowania nowoczesnych strategii modulowania reakcji zapalnej.

Modulacja funkcji biologicznych makrofagów przez egzosomy i miRNA

Biologiczna i immunologiczna aktywność makrofagów, która odpowiada za utrzymanie homeostazy oraz za przebieg wielu procesów toczących się w organizmie, może również podlegać modulacji przez działanie cząsteczek miRNA i egzosomów. Cząsteczki ATP poprzez pobudzenie kanałów receptorowych P2X7 aktywują w mysich makrofagach egzocytozę egzosomów zawierających kaspazę-1 oraz prekursor IL-1β, co pozwala na bardzo szybkie uczynnienie tej cytokiny w miejscu aktywacji prozapalnej makrofagów [89]. Pod wpływem ATP-zależnej aktywacji P2X7 makrofagi mogą także wydzielać egzosomy z cząsteczkami MHC klasy II na powierzchni [90], co może ułatwiać proces prezentacji antygenów i indukcji oraz organizacji odpowiedzi zapalnej. Egzosomy wydzielane przez ludzkie komórki prezentujące antygen, w tym makrofagi, zawierają enzymy niezbędne do miejscowej syntezy leukotrienów, odpowiedzialnych za rozwój i zaostrzenie objawów alergii, astmy i przewlekłych stanów zapalnych, m.in. przez promowanie migracji granulocytów [31]. Egzosomy wytwarzane pod wpływem IL-13 przez komórki epitelialne w drogach oddechowych myszy z zaindukowaną astmą stymulują różnicowanie i chemotaksję monocytów/makrofagów. Zablokowanie możliwości ich uwalniania prowadzi do zahamowania aktywacji monocytów i złagodzenia objawów astmy [58]. Regulatorowe białko sygnałowe α (signal-regulatory protein α, SIRPα) moduluje odpowiedź zapalną leukocytów. Wykazano, iż w makrofagach stymulowanych LPS obserwuje się obniżenie aktywności SIRPα mediowane przez miRNA-17, miRNA-20a oraz miRNA-106a. Dochodzi do aktywacji zapalnej makrofagów ze wzmożeniem ich zdolności do migracji, fagocytozy i wytwarzania cytokin prozapalnych [130].

Natomiast rezolucja (wyciszenie) ostrego stanu zapalnego jest skutkiem np. aktywacji wytwarzania resolwin, m.in. pod wpływem niewielkich dawek aspiryny [57]. Zaobserwowano, iż resolwina D1 wzmaga ekspresję miRNA-219 oraz miRNA-208a. Ponadto wzrost ekspresji miRNA-208 w ludzkich makrofagach pochodzących z monocytów koreluje ze wzmożonym wytwarzaniem IL-10 [57]. Natomiast w ludzkich monocytach różnicujących do makrofagów o fenotypie M1 miRNA-9 reguluje ekspresję receptora PPARδ, który jest zaangażowany w odpowiedź przeciwzapalną makrofagów [112]. Również witamina D3 ma właściwości immunomodulujące. W makrofagach hamuje ekspresję miRNA-155, prowadząc do aktywacji białka supresorowego SOCS1 (suppressor of cytokine signaling 1). Dochodzi do zahamowania reakcji zapalnej mediowanej przez makrofagi [24]. Nowo odkryty mechanizm supresji nadwrażliwości kontaktowej u myszy mediowany jest przez limfocyty T CD8+ supresyjne, które wydzielają regulacyjne egzosomy zawierające miRNA-150 (czynnik T supresyjny) [16]. Makrofagi zdają się pośredniczyć w przekazywaniu sygnału supresji limfocytom efektorowym reakcji nadwrażliwości kontaktowej. Ponadto egzosomalny czynnik T supresyjny jest zdolny do modulacji wytwarzania ROIs przez makrofagi [82], a tak- że ich zdolności do indukcji odpowiedzi humoralnej skierowanej przeciwko antygenom korpuskularnym.

Różne czynniki endokrynne regulują odpowiedź makrofagów. Silnymi czynnikami immunosupresyjnymi są m.in. hormony kortykosteroidowe. Progesteron obniża reaktywność makrofagów indukowaną przez ligandy receptorów TLR przez zahamowanie ekspresji miRNA-155, co wpływa na obniżenie wytwarzania cytokin prozapalnych [109]. Stan supresji układu immunologicznego pod wpływem progesteronu obserwowany jest m.in. w okresie ciąży i może wynikać ze zmienionej ekspresji regulacyjnych cząsteczek miRNA w mechanizmie działania endogennego progesteronu [109]. Egzosomy wydzielane przez łożysko rekrutują monocyty i stymulują ich dojrzewanie do makrofagów o fenotypie prozapalnym [5]. Fibronektyna na powierzchni egzosomów wydzielanych przez ludzki trofoblast w I trymestrze ciąży indukuje sekrecję IL-1β przez makrofagi bez internalizacji egzosomów trofoblastu. Makrofagowa IL-1β jest jednym z niezbędnych mediatorów rekrutacji komórek immunologicznych i prawidłowego formowania się łożyska [6], które stanowi barierę ochronną dla rozwijającego się płodu.

Immunologiczne funkcje makrofagów w centralnym systemie nerwowym pełni głównie mikroglej, jako populacja wyspecjalizowanych rezydualnych makrofagów tkankowych o fenotypie przeciwzapalnym. Dla aktywowanego mikrogleju natomiast charakterystyczna jest ekspresja miRNA-124, którego aktywność w komórkach mikrogleju prowadzi do obniżenia ekspresji MHC klasy II i molekuł kostymulujących oraz zahamowania wytwarzania TNF-α i IL-6 [87], co zdaje się stanowić element sprzężenia zwrotnego ujemnego, który odpowiada za supresję reakcji immunologicznej i utrzymanie stanu tolerancji w obrębie centralnego systemu nerwowego. Makrofagi transfekowane in vitro plazmidowym DNA kodującym katalazę podane myszom wydzielały egzosomy zawierające podany materiał genetyczny, jak również zsyntetyzowane białko enzymatyczne [44]. Egzosomy, po pobraniu przez neurony, aktywowały w tych komórkach syntezę katalazy, która pełni funkcję neuroprotekcyjną. Zredukowano przebieg reakcji zapalnej i uzyskano poprawę sprawności motorycznej u myszy z indukowanym modelem choroby Parkinsona [44].

W makrofagach kostnych różnicowanie się komórek prekursorowych do osteoklastów wydaje się pozostawać pod kontrolą cząsteczek miRNA. miRNA-21 stymuluje osteoklastogenezę indukowaną RANKL. Również miRNA-223 jest odpowiedzialny za regulację osteoklastogenezy [97], przez pośredni wpływ na ekspresję błonową receptora dla M-CSF, którego aktywacja mediuje proces różnicowania komórek prekursorowych w kierunku osteoklastów [121]. Ekspresję miRNA-223 wykazano także w komórkach synowialnych osób chorujących na reumatoidalne zapalenie stawów, w tym w makrofagach. W hodowlach in vitro wykazano jednak, iż nadekspresja miRNA-223 blokuje osteoklastogenezę, co pośrednio może się przyczyniać do zahamowania procesu destrukcji kości u osób z zapaleniem stawów [97]. Natomiast miRNA-146, jako negatywny regulator procesu zapalnego i osteoklastogenezy [97], wydaje się pełnić bezpośrednią funkcję ochronną dla mikrośrodowiska kostno- -stawowego.

Rola egzosomów i miRNA modulujących aktywność makrofagów w chorobach metabolicznych

Obserwowane w otyłości obniżenie ekspresji miRNA-146 w monocytach jest skorelowane z upośledzeniem przeciwzapalnego działania adiponektyny oraz rozwojem stresu oksydacyjnego [47]. Natomiast indukowana pod wpływem IL-4 ekspresja miRNA-7a-1 (let7a-1) hamuje zależną od IL-4 fuzję makrofagów do wielojądrzastych komórek olbrzymich [108], których obecność wykazuje się w przebiegu miażdżycy i otyłości. Mechanizm regulacyjny z udziałem miRNA-223 hamuje aktywację fenotypu M1 makrofagów u osób przyjmujących dietę bogatą w tłuszcze nasycone, co w pewnym stopniu przeciwdziała rozwojowi stanu zapalnego [133]. Jednak pobieranie przez monocyty egzosomów wydzielanych przez tkankę tłuszczową skutkuje aktywacją prozapalną tych komórek i rozwojem oporności insulinowej [29]. Wykazano jednak, iż galektyna-5 obecna na powierzchni szczurzych egzosomów pochodzenia retikulocytarnego hamuje internalizację pęcherzyków z błoną makrofagów [11]. Obserwacja ta może się przyczynić do wypracowania strategii hamowania internalizacji egzosomów i niepożądanej aktywacji makrofagów przez zawarte w nich cząsteczki. Opisano również ochronną rolę miRNA-193b oraz miRNA-126, których ekspresja koreluje z obniżeniem wytwarzania CCL2 przez makrofagi i adipocyty oraz ekspresji α-X-integryny, markera aktywacji prozapalnej makrofagów. miRNA-126, przez związanie sekwencji mRNA dla CCL2, hamuje syntezę chemokiny, która indukuje naciek komórek immunologicznych w obrębie tkanki tłuszczowej i promuje rozwój zapalenia towarzyszącego otyłości. Zahamowanie ekspresji miRNA-126 i miRNA-193b obserwowane jest w białej tkance tłuszczowej osób otyłych [4]. Modulacja ekspresji wspomnianych cząsteczek miRNA mogłaby mieć korzystny wpływ przez hamowanie stanu zapalnego towarzyszącego zespołowi metabolicznemu.

Utleniona postać LDL (oxLDL), podobnie jak IFN-γ, indukuje w makrofagach ekspresję miRNA-155. U myszy ApoE-/- z dodatkowym niedoborem miRNA-155 zaobserwowano redukcję nacieku makrofagów w obrębie zmian miażdżycowych w porównaniu do myszy ApoE-/- bez upo- śledzenia funkcji miRNA-155. Ponadto utrata miRNA-155 w makrofagach blaszki miażdżycowej redukuje stężenie CCL2, która jest odpowiedzialna za rekrutację monocytów do blaszki, a obecność miRNA-155 wzmaga przebieg reakcji zapalnej w ścianie naczyń krwionośnych [80]. Zastosowanie u myszy ApoE-/- antagonisty miRNA-342-5p spowalnia powstawanie zmian miażdżycowych oraz hamuje miRNA-155-zależną prozapalną aktywację makrofagów [119]. Natomiast ligandy receptorów wątrobowych X (LXR) wzmagają w makrofagach ekspresję miRNA-144, które zdaje się regulować metabolizm cholesterolu i jego pochłanianie przez makrofagi [92]. Aktywacja TLR4 obniża w makrofagach ekspresję miRNA-107, którego ekspresja jest wzmożona w  mysich modelach otyłości i oporności insulinowej. Sekwencja docelowa dla miRNA-107 jest obecna w genie dla czynnika CDK6, który jest odpowiedzialny m.in. za migrację komórek, a także w genie dla kawedyny-1 (cavedin-1). Białko to jest zaangażowane w rozwój oporności insulinowej, a w makrofagach dodatkowo w regulację ekspresji powierzchniowej receptorów CD14 i CD36. Ponadto kawedyna-1 wiąże się z receptorem TLR4, dochodzi do osłabienia sygnalizacji indukowanej w makrofagach przez LPS. Zatem miRNA-107 obniżając w makrofagach ekspresję kawedyny-1 może zahamować rozwój tolerancji na LPS, a także może się przyczyniać do rozwoju przewlekłej aktywacji prozapalnej makrofagów indukowanej ligandami TLR4 [35].

Modulacja funkcji makrofagów w przebiegu nowotworów i zakażeń przez egzosomy oraz cząsteczki miRNA

Uważa się, iż komórki nowotworowe prawdopodobnie komunikują się z makrofagami towarzyszącymi nowotworom (tumor associated macrophages, TAMs) nie tylko przez kontakt bezpośredni czy cytokinowy, ale także przez wydzielane mikropęcherzyki transportujące m.in. mRNA do monocytów krwi obwodowej [9]. Jednym z potencjalnych mechanizmów promocji wzrostu i przerzutowania nowotworów przez TAMs może być zaobserwowana w nowotworze piersi sygnalizacja przez egzosomy pochodzenia makrofagowego, które dostarczają do komó- rek nowotworu cząsteczki miRNA odpowiedzialne za stymulację inwazyjności. Wydzielane w hodowli egzosomy zawierały cząsteczki miRNA-223 charakterystyczne dla alternatywnie aktywowanych makrofagów, które mogą promować inwazyjność komórek nowotworowych [123]. Ponadto zaobserwowano, iż poziom ekspresji miRNA-92a w komórkach nowotworu piersi wykazywał odwrotną korelację do liczby makrofagów naciekających guz [84], co zdaje się wskazywać na udział miRNA w interakcjach komórek nowotworowych i immunologicznych.

Ekspresja miRNA-223 hamuje wytwarzanie IL-1β przez makrofagi. Podobnie działają wirusowe cząsteczki RNA wydzielane i transportowane m.in. egzosomalnie przez zainfekowane limfocyty B. Obserwowane jest znaczne upośledzenie odporności przeciwzakaźnej [43]. Egzosomy wydzielane przez limfocyty B zakażone wirusem Epsteina-Barr zawierają miRNA pochodzenia wirusowego i hamują cytotoksyczność monocytów oraz makrofagów [106]. Aktywność miRNA-466I pośrednio wzmaga sekrecję IL-10, natomiast bezpośrednio hamuje wydzielanie IFN-α/β w makrofagach zakażonych wirusami, przez co zdaje się hamować przeciwwirusową odpowiedź makrofagów [68]. Przez ligandy receptorów TLR3 i TLR9 oraz IFN-α/β w makrofagach indukowana jest ekspresja miRNA-155 [78], który, przez indukcję ich fenotypu prozapalnego, może potęgować odpowiedź przeciwwirusową makrofagów.

Namnażające się w  zakażonych makrofagach wirusy ludzkiego niedoboru odporności (HIV) są upakowywane do egzosomów, które po egzocytozie do otoczenia ułatwiają zakażanie następnych makrofagów [83]. W monocytach i makrofagach zaobserwowano obecność cząsteczek tzw. anty-HIV-1 miRNA (miRNA-28, miRNA-125b, miRNA-150 oraz miRNA-382) [88,116,117]. Stwierdzono wyższą ekspresję tych cząsteczek miRNA w monocytach w porównaniu z makrofagami, co czyni komórki monocytarne bardziej odpornymi na zakażenie [116]. Cząsteczki te wykazują zdolność do regulacji zakaźności i stanu latencji wirusa. Modulacja ich ekspresji wpływa na odporność monocytów/makrofagów na zakażenie wirusem HIV oraz na ciężkość przebiegu infekcji. Morfina w hodowli ludzkich monocytów obniżała ekspresję anty-HIV miRNA przez działanie na receptory mi [88]. Hamuje także ekspresję anty-HIV miRNA indukowaną interferonem. Cząsteczki miRNA hamują replikację wirusowego materiału genetycznego w makrofagach [117]. Podobnie obniżoną ekspresję cząsteczek miRNA wykazują monocyty izolowane z krwi osób uzależnionych od heroiny. Morfina wzmaga dodatkowo ekspresję receptora CCR5 dla chemokin na powierzchni monocytów, makrofagów i komórek mikrogleju, który jest jednym z koreceptorów umożliwiających wejście wirusa HIV do komórki gospodarza [88]. Dlatego uważa się, iż morfina wzmaga podatność makrofagów na zakażenie wirusem HIV. Zastosowanie antagonistów receptora mi, np. naltreksonu, odwraca niekorzystne działanie terapii morfiną [117]. Ponadto w monocytach/makrofagach nosicieli wirusa HIV przyjmujących morfinę wykazano wzrost ekspresji miRNA-15b i zahamowanie miRNA-181b. Dzia- łanie morfiny może się przyczyniać również do indukcji nacieku zakażonych makrofagów do centralnego systemu nerwowego i szerzenia zmian neurologicznych [27]. Natomiast aktywacja TLR3 w makrofagach przez poli I:C hamuje zdolność do zakażenia makrofagów i do replikacji wirusa HIV, przez indukcję białek przeciwwirusowych, w tym IFN-α/β, a także ekspresji wcześniej wymienionych cząsteczek uważanych za anty-HIV miRNA. Ponadto wzmaga syntezę chemokinowych ligandów dla wspomnianego wyżej receptora CCR5, których nadmiar blokuje możliwość wejścia wirusa do komórki. Uważa się, że dodatkowa stymulacja ligandami TLR3 będzie korzystna w terapii zakażenia HIV [129].

Ekspresja miRNA-92a w  makrofagach jest hamowana w odpowiedzi na stymulację TLR, co pozwala na rozwinięcie reakcji zapalnej z wytwarzaniem cytokin prozapalnych [62]. Natomiast za rozwój tolerancji makrofagów na LPS indukowanej przewlekłą stymulacją TLR4 najprawdopodobniej odpowiada miRNA-146a, którego nadekspresja obserwowana jest w makrofagach podczas zakażeń bakteryjnych i pod działaniem IL-1β oraz TNF-α [78]. LPS izolowany ze ściany Porphyromonas gingivalis indukuje w makrofagach ekspresję miRNA-146a, podobnie jak LPS E. coli, co również może się przyczyniać do rozwoju tolerancji na LPS. Ponadto LPS indukuje ekspresję miRNA-9 oraz miRNA-155 w makrofagach [45]. Podobnie, kilkukrotna stymulacja TLR2 in vitro przez peptydoglikan natychmiast wzmaga ekspresję miRNA-132 oraz miRNA-212 w makrofagach, co prowadziło do indukcji tolerancji mediowanej przez te cząsteczki miRNA [79]. W hodowli makrofagów wykazano, iż kontakt z Candida albicans indukuje ekspresję miRNA-155, miRNA-125a, miRNA-146a oraz miRNA-455 w sposób zależny od aktywacji NF-κB [75]. Podobnie zakażenie Listeria monocytogenes indukuje w mysich makrofagach ekspresję miRNA-155, miRNA-125a, miRNA-146a oraz miRNA-149 [96]. Natomiast egzosomy Cryptococcus neoformans aktywują wzrost wytwarzania cytokin przeciwzapalnych przez makrofagi, jak również tlenku azotu, który jest toksyczny dla komórek grzyba [106].

Makrofagi zakażone patogenami wewnątrzkomórkowymi mają zdolność do wydzielania egzosomów zawierających na powierzchni cząsteczki wzorców molekularnych budowy patogennej (PAMPs). Egzosomy te ułatwiają indukcję odpowiedzi przeciwzakaźnej makrofagów niezakażonych, przez aktywację ich TLR, która wywołuje wytwarzanie IL- 12 i TNF-α [13]. Zaobserwowano również, iż egzosomy wydzielane przez mysie makrofagi zakażone Mycobacterium spp. są zdolne do rekrutacji i aktywacji komórek immunologicznych, w tym naiwnych makrofagów, a także do indukcji wytwarzania cytokin prozapalnych (TNF-α) oraz chemokin (CCL5, MIP). Jednocześnie egzosomy blokują odpowiedź makrofagów na IFN-γ [107]. Ponadto związki lipidowe prątków gruźlicy obecne w błonie egzosomów indukują w makrofagach proces różnicowania do wielojądrzastych komórek olbrzymich, promując tworzenie ziarniniaków [107]. Wykazano również, iż Mycobacterium spp. modulują aktywność fagocytarną makrofagów przez indukcję miRNA-142-3p, które unieczynnia białko wiążące aktynę, co w konsekwencji upośledza fagocytozę bakterii [12]. Makrofagi zakażone M. tuberculosis wykazują nadekspresję miRNA-155. Hamowanie aktywności miRNA-155 utrudnia przeżycie prątków w makrofagach. miRNA-155 w makrofagach hamuje aktywność COX-2 i IL-6 oraz po- średnio aktywuje hemooksygenazę-1, która prawdopodobnie jest odpowiedzialna za przejście prątków w postać spoczynkową [59]; miRNA-155 wykazuje działanie antyapoptotyczne. W makrofagach zakażonych Helicobacter pylori wzrosta ekspresjia miRNA-155 [54], co może wpływać na wzrost przeżywalności zakażonych makrofagów. Natomiast zakażenie makrofagów Brucella spp. zmienia profil ekspresji cząsteczek miRNA w makrofagach, co przyczynia się do rozwoju przewlekłej postaci brucelozy. W hodowli komórek linii RAW w odpowiedzi na zakażenie Brucella spp. zaobserwowano wzmożoną ekspresję miRNA-1981, który również hamuje procesy apoptotyczne w komórce [127].

Supresja odpowiedzi makrofagów w przebiegu leiszmaniozy może być wynikiem zaburzenia szlaków sygnalizacji wewnątrzkomórkowej przez cząsteczki wytwarzane w mikropęcherzykach wewnątrzkomórkowych przez Leishmania spp. Zainfekowane makrofagi wytwarzają wówczas IL-10, zamiast cytokin prozapalnych [106]. Leishmania spp. Indukuje również wydzielanie przez zakażone makrofagi egzosomów, które następnie są pochłaniane przez naiwne makrofagi i stymulują je do wytwarzania IL-8 odpowiedzialnej za migrację neutrofilów [105], które mogą mediować odpowiedź przeciwzakaźną.

W badaniach eksperymentalnych podejmowane są także próby modulacji aktywności makrofagów przez egzogenne cząsteczki siRNA dostarczane do komórek różnymi drogami. Niedawno porównano skuteczność, wydajność oraz potencjalną toksyczność kilku nośników siRNA, któ- re wyciszało ekspresję genu TNF-α w makrofagach [49]. Wykazano, iż aktywność zapalna makrofagów może podlegać regulacji w wyniku interferencji RNA przez związane z nośnikami siRNA nawet po podaniu doustnym [3].

Różnorodne cząsteczki miRNA są zaangażowane zarówno w pozytywną, jak i w negatywną regulację reakcji zapalnej mediowanej przez makrofagi. Podobnie mikropęcherzyki i egzosomy transportujące różnorodne czynniki regulatorowe, enzymy czy receptory i cząsteczki sygnałowe mają zdolność do modulowania funkcji makrofagów, modulując pozytywne lub negatywne mechanizmy regulacji stanu homeostazy organizmu.

Podsumowanie

Makrofagi charakteryzują się ekspresją różnorodnych cząsteczek i receptorów, a ich aktywność podlega regulacji przez wiele różnorodnych czynników endo- i egzogennych. Możliwość modulowania aktywności makrofagów oraz ich aktualnego fenotypu staje się obiecującym celem strategii terapeutycznych wielu schorzeń.

Makrofagi są populacją komórek docelowych immunosupresyjnego działania glikokortykosteroidów egzogennych. Podobnie jak dla wielu leków przeciwzapalnych których działanie terapeutyczne wywierane jest przez bezpośrednie lub pośrednie wpływanie na makrofagi. Ponadto niektóre leki przeciwnowotworowe oraz stosowane w terapii schorzeń metabolicznych czy neuropsychiatrycznych również mają zdolność do wzmagania lub hamowania wybranych funkcji makrofagów, co może dodatkowo podnosić efektywność terapii.

Negatywna regulacja reakcji zapalnej mediowanej przez makrofagi zależy przede wszystkim od ekspresji cząsteczek miRNA-146a oraz miRNA-147, natomiast miRNA-155 jest głównym aktywatorem prozapalnego fenotypu makrofagów. Dojrzewanie komórek prekursorowych do monocytów/makrofagów oraz osteoklastów jest natomiast wynikiem aktywności miRNA-223. Zidentyfikowano wiele cząsteczek miRNA, które regulują aktywację makrofagów w przebiegu nowotworów, zakażeń oraz chorób metabolicznych i neuroendokrynnych. Natomiast ekspresja cząsteczek miRNA-28, miRNA-125b, miRNA-150 oraz miRNA-382 czyni monocyty/makrofagi bardziej odpornymi na zakażenie wirusem HIV. W pracy podjęto próbę zebrania aktualnej wiedzy dotyczącej możliwości modulowania funkcji makrofagów przez substancje lecznicze oraz cząsteczki miRNA i egzosomy. Mediatory te wykazują silne właściwości modulujące aktywność makrofagów, a mechanizmy ich działania i potencjalne nowe zastosowania w terapii są tematem wielu badań podstawowych i klinicznych.

Przypisy

• 1. Advani M.J., Siddiqui I., Sharma P., Reddy H.: Activity of trifluoperazineagainst replicating, non-replicating and drug resistant M.tuberculosis. PLoS One, 2012; 7: e44245
  Google Scholar
• 2. Akao Y., Iio A., Itoh T., Noguchi S., Itoh Y., Ohtsuki Y., Naoe T.:Microvesicle-mediated RNA molecule delivery system using monocytes/macrophages.Mol. Ther., 2011; 19: 395-399
  Google Scholar
• 3. Aouadi M., Tesz G.J., Nicoloro S.M., Wang M., Chouinard M., SotoE., Ostroff G.R., Czech M.P.: Orally delivered siRNA targeting macrophageMap4k4 suppresses systemic inflammation. Nature, 2009;458: 1180-1184
  Google Scholar
• 4. Arner E., Mejhert N., Kulyte A., Balwierz P.J., Pachkov M., CormontM., Lorente-Cebrian S., Ehrlund A., Laurencikiene J., Heden P.,Dahlman-Wright K., Tanti J.F., Hayashizaki Y., Ryden M., DahlmanI., van Nimwegen E., Daub C.O., Arner P.: Adipose tissue microRNAsas regulators of CCL2 production in human obesity. Diabetes, 2012;61: 1986-1993
  Google Scholar
• 5. Atay S., Gercel-Taylor C., Suttles J., Mor G., Taylor D.D.: Trophoblast-derivedexosomes mediate monocyte recruitment and differentiation.Am. J. Reprod. Immunol., 2011; 65: 65-77
  Google Scholar
• 6. Atay S., Gercel-Taylor C., Taylor D.D.: Human trophoblast-derivedexosomal fibronectin induces pro-inflammatory IL-1β productionby macrophages. Am. J. Reprod. Immunol., 2011; 66: 259-269
  Google Scholar
• 7. Baeck C., Wehr A., Karlmark K.R., Heymann F., Vucur M., GasslerN., Huss S., Klussmann S., Eulberg D., Luedde T., Trautwein C., TackeF.: Pharmacological inhibition of the chemokine CCL2 (MCP-1) diminishesliver macrophage infiltration and steatohepatitis in chronichepatic injury. Gut, 2012; 61: 416-426
  Google Scholar
• 8. Bahr I.N., Tretter P., Kruger J., Stark R.G., Schimkus J., Unger T.,Kappert K., Scholze J., Parhofer K.G., Kintscher U.: High-dose treatmentwith telmisartan induces monocytic peroxisome proliferator–activated receptor-γ target genes in patients with the metabolicsyndrome. Hypertension, 2011; 58: 725-732
  Google Scholar
• 9. Baj-Krzyworzeka M., Szatanek R., Weglarczyk K., Baran J., ZembalaM.: Tumour-derived microvesicles modulate biological activity ofhuman monocytes. Immunol. Lett., 2007; 113: 76-82
  Google Scholar
• 10. Banerjee S., Xie N., Cui H., Tan Z., Yang S., Icyuz M., AbrahamE., Liu G.: MicroRNA let-7c regulates macrophage polarization. J.Immunol., 2013; 190: 6542-6549
  Google Scholar
• 11. Barres C., Blanc L., Bette-Bobillo P., Andre S., Mamoun R., GabiusH.J., Vidal M.: Galectin-5 is bound onto the surface of rat reticulocyteexosomes and modulates vesicle uptake by macrophages.Blood, 2010; 115: 696-705
  Google Scholar
• 12. Bettencourt P., Marion S., Pires D., Santos L.F., Lastrucci C.,Carmo N., Blake J., Benes V., Griffiths G., Neyrolles O., Lugo-VillarinoG., Anes E.: Actin-binding protein regulation by microRNAsas a novel microbial strategy to modulate phagocytosis by hostcells: the case of N-Wasp and miR-142-3p. Front. Cell. Infect. Microbiol.,2013; 3: 1-17
  Google Scholar
• 13. Bhatnagar S., Shinagawa K., Castellino F.J., Schorey J.S.: Exosomesreleased from macrophages infected with intracellular pathogensstimulate a proinflammatory response in vitro and in vivo.Blood, 2007; 110: 3234-3244
  Google Scholar
• 14. Bosco M.C., Rapisarda A., Massazza S., Melillo G., Young H., VaresioL.: The tryptophan catabolite picolinic acid selectively induces the chemokines macrophage inflammatory protein-1α and -1β inmacrophages. J. Immunol., 2000; 164: 3283-3291
  Google Scholar
• 15. Bryniarski K.: The influence of cyclophosphamide on immunefunction of murine macrophages. W: Pharmacology. Red.: L. Gallelli.InTech, Rijeka 2012, 143-160
  Google Scholar
• 16. Bryniarski K., Ptak W., Jayakumar A., Püllmann K., Caplan M.,Chairoungdua A., Lu J., Adams B., Sikora E., Nazimek K., Marquez S.,Kleinstein S.H., Sangwung P., Iwakiri Y.,Delgato E., Redegeld F., BlokhuisB.R., Wojcikowski J., Daniel A.W., Groot Kormelink T., AskenaseP.W.: Antigen specific, antibody coated, exosome-like nanovesiclesdeliver suppressor T-cell miRNA-150 to effector T cells to inhibitcontact sensitivity. J. Allergy Clin. Immunol., 2013; 132: 170-181
  Google Scholar
• 17. Bryniarski K., Szczepanik M., Ptak M., Zemelka M., Ptak W.: Influenceof cyclophosphamide and its metabolic products on the activityof peritoneal macrophages in mice. Pharmacol. Rep., 2009; 61: 550-557
  Google Scholar
• 18. Buhtoiarov I.N., Sondel P.M., Wigginton J.M., Buhtoiarova T.N.,Yanke E.M., Mahvi D.A., Rakhmilevich A.L.: Anti-tumour synergyof cytotoxic chemotherapy and anti-CD40 plus CpG-ODN immunotherapythrough repolarization of tumour-associated macrophages.Immunology, 2011; 132: 226-239
  Google Scholar
• 19. Butchar J.P., Mehta P., Justiniano S.E., Guenterberg K.D., KondadasulaS., Mo X., Chemudupati M., Kanneganti T., Amer A., MuthusamyN., Jarjoura D., Marsh C.B., Carson W.E., Byrd J.C., TridandapaniS.: Reciprocal regulation of activating and inhibitory Fcγ receptorsby TLR7/8 activation: implications for tumor immunotherapy. Clin.Cancer Res., 2010; 16: 2065-2075
  Google Scholar
• 20. Cashman J.R., Ghirmai S., Abel K.J., Fiala M.: Immune defects inAlzheimer’s disease: new medications development. BMC Neurosci.,2008; 9 (Suppl. 2): S13
  Google Scholar
• 21. Chawla A., Nguyen K.D., Goh Y.P.: Macrophage-mediated inflammationin metabolic disease. Nat. Rev. Immunol., 2011; 11: 738-749
  Google Scholar
• 22. Chen Q., Massague J.: Molecular pathways: VCAM-1 as a potentialtherapeutic target in metastasis. Clin. Cancer Res., 2012; 18: 5520-5525
  Google Scholar
• 23. Chen Q., Zhang X.H., Massague J.: Macrophage binding to receptorVCAM-1 transmits survival signals in breast cancer cells thatinvade the lungs. Cancer Cell, 2011; 20: 538-549
  Google Scholar
• 24. Chen Y., Liu W., Sun T., Huang Y., Wang Y., Deb D.K., Yoon D.,Kong J., Thadhani R., Li Y.C.: 1,25-dihydroxyvitamin D promotes negativefeedback regulation of TLR signaling via targeting microRNA-155-SOCS1in macrophages. J. Immunol., 2013; 190: 3687-3695
  Google Scholar
• 25. Cheng X.W., Song H., Sasaki T., Hu L., Inoue A., Bando Y.K., ShiG-P., Kuzuya M., Okumura K., Murohara T.: Angiotensin type 1 receptorblocker reduces intimal neovascularization and plaque growthin apolipoprotein E-deficient mice. Hypertension, 2011; 57: 981-989
  Google Scholar
• 26. Covelli V., Maffione A.B., Nacci C., Tato E., Jirillo E.: Stress, neuropsychiatricdisorders and immunological effects exerted by benzodiazepines.Immunopharmacol. Immunotoxicol., 1998; 20: 199-209
  Google Scholar
• 27. Dave R.S., Khalili K.: Morphine-treatment of human monocyte-derivedmacrophages induces differential miRNA and proteinexpression: impact on inflammation and oxidative stress in the centralnervous system. J. Cell. Biochem., 2010; 110: 834-845
  Google Scholar
• 28. Davi G., Santilli F., Vazzana N.: Thromboxane receptors antagonistsand/or synthase inhibitors. W: Antiplatelet Agents, Handbookof Experimental Pharmacology. Red.: P. Gresele. Springer-Verlag,Berlin Heidelberg 2012; 210: 261-286
  Google Scholar
• 29. Deng Z., Poliakov A., Hardy R.W., Clements R., Liu C., Liu Y.,Wang J., Xiang X., Zhang S., Zhuang X., Shah S.V., Sun D., MichalekS., Grizzle W.E., Garvey T., Mobley J., Zhang H.: Adipose tissue exosome-likevesicles mediate activation of macrophage-induced insulinresistance. Diabetes, 2009; 58: 2498-2505
  Google Scholar
• 30. Donnelly L.E., Tudhope S.J., Fenwick P.S., Barnes P.J.: Effects offormoterol and salmeterol on cytokine release from monocyte-derivedmacrophages. Eur. Res. J., 2010; 36: 178-186
  Google Scholar
• 31. Esser J., Gehrmann U., D’Alexandri F.L., Hidalgo-Estevez A.M.,Wheelock C.E., Scheynius A., Gabrielsson S., Radmark O.: Exosomesfrom human macrophages and dendritic cells contain enzymes forleukotriene biosynthesis and promote granulocyte migration. J. AllergyClin. Immunol., 2010; 126: 1032-1040
  Google Scholar
• 32. Etzerodt A., Moestrup S.K.: CD163 and inflammation: biological,diagnostic and therapeutic aspects. Antioxid. Redox Signal., 2013;18: 2352-2363
  Google Scholar
• 33. Fiala M., Liu P.T., Espinosa-Jeffrey A., Rosenthal M.J., Bernard G.,Ringman J.M., Sayre J., Zhang L., Zaghi J., Dejbakhsh S., Chiang B., HuiJ., Mahanian M., Baghaee A., Hong P., Cashman J.: Innate immunityand transcription of MGAT-III and Toll-like receptors in Alzheimer’sdisease patients are improved by bisdemethoxycurcumin. Proc.Natl. Acad. Sci. USA, 2007; 104: 12849-12854
  Google Scholar
• 34. Filipczak-Bryniarska I., Nowak B., Sikora E., Nazimek K., WorońJ., Wordliczek J., Bryniarski K.: The influence of opioids on thehumoral and cell-mediated immune responses in mice. The role ofmacrophages. Pharmacol. Rep., 2012; 64: 1200-1215
  Google Scholar
• 35. Foley N.H., O’Neill L.A.: miR-107: a Toll-like receptor-regulatedmiRNA dysregulated in obesity and type II diabetes. J. Leukoc. Biol.,2012; 92: 521-527
  Google Scholar
• 36. Fontana L., Pelosi E., Greco P., Racanicchi S., Testa U., Liuzzi F.,Croce C.M., Brunetti E., Grignani F., Peschle C.: MicroRNAs 17-5p-20a–106a control monocytopoiesis through AML1 targeting and M-CSFreceptor upregulation. Nat. Cell Biol., 2007; 9: 775-787
  Google Scholar
• 37. Fujisaka S., Usui I., Kanatani Y., Ikutani M., Takasaki I., TsuneyamaK., Tabuchi Y., Bukhari A., Yamazaki Y., Suzuki H., SendaS., Aminuddin A., Nagai Y., Takatsu K., Kobayashi M., Tobe K.: Telmisartanimproves insulin resistance and modulates adipose tissuemacrophage polarization in high-fat-fed mice. Endocrinology, 2011;152: 1789-1799
  Google Scholar
• 38. Gantier M.P., Sadler A.J., Williams B.R.: Fine-tuning of the innateimmune response by microRNAs. Immunol. Cell Biol., 2007;85: 458-462
  Google Scholar
• 39. Gantke T., Sriskantharajah S., Ley S.C.: Regulation and functionof TPL-2, an IκB kinase-regulated MAP kinase kinase kinase. CellRes., 2011; 21: 131-145
  Google Scholar
• 40. Garratty G.: Drug-induced immune hemolytic anemia. Hematology,2009; 2009: 73-79
  Google Scholar
• 41. Gaskill P.J., Carvallo L., Eugenin E.A., Berman J.W.: Characterizationand function of the human macrophage dopaminergic system:implications for CNS disease and drug abuse. J. Neuroinflammation,2012; 9: 203-218
  Google Scholar
• 42. Graff J.W., Dickson A.M., Clay G., McCaffrey A.P., Wilson M.E.:Identifying functional microRNAs in macrophages with polarizedphenotypes. J. Biol. Chem., 2012; 287: 21816-21825
  Google Scholar
• 43. Haneklaus M., Gerlic M., Kurowska-Stolarska M., Rainey A.,Pich D., McInnes I.B., Hammerschmidt W., O’Neill L.A., Masters S.L.:Cutting edge: miR-223 and EBV miR-BART15 regulate the NLRP3 inflammasomeand IL-1β production. J. Immunol., 2012; 189: 3795-3799
  Google Scholar
• 44. Haney M.J., Zhao Y., Harrison E.B., Mahajan V., Ahmed S., He Z.,Suresh P., Hingtgen S.D., Klyachko N.L., Mosley R.L., Gendelman H.E.,Kabanov A.V., Batrakova E.V.: Specific transfection of inflamed brainby macrophages: a new therapeutic strategy for neurodegenerativediseases. PLoS One, 2013; 8: e61852
  Google Scholar
• 45. Honda T., Takahashi N., Miyauchi S., Yamazaki K.: Porphyromonasgingivalis lipopolysaccharide induces miR-146a without alteringthe production of inflammatory cytokines. Biochem. Biophys. Res.Commun., 2012; 420: 918-925
  Google Scholar
• 46. Hotchi J., Hoshiga M., Takeda Y., Yuki T., Fujisaka T., IshiharaT., Hanafusa T.: Plaque-stabilizing effect of angiotensin-convertingenzyme inhibitor and/or angiotensin receptor blocker in a rabbitplaque model. J. Atheroscler. Thromb., 2012; 20: 257-266
  Google Scholar
• 47. Hulsmans M., Van Dooren E., Mathieu C., Holvoet P.: Decreaseof miR-146b-5p in monocytes during obesity is associated with lossof the anti-inflammatory but not insulin signaling action of adiponectin.PLoS One, 2012; 7: e32794
  Google Scholar
• 48. Ismail N., Wang Y., Dakhlallah D., Moldovan L., Agarwal K., BatteK., Shah P., Wisler J., Eubank T.D., Tridandapani S., Paulaitis M.E.,Piper M.G., Marsh C.B.: Macrophage microvesicles induce macrophagedifferentiation and miR-223 transfer. Blood, 2013; 121: 984-995
  Google Scholar
• 49. Jensen L.B., Griger J., Naeye B., Varkouhi A.K., Raemdonck K.,Schiffelers R., Lammers T., Storm G., de Smedt S.C., Sproat B.S., NielsenH.M., Foged C.: Comparison of polymeric siRNA nanocarriersin a murine LPS-activated macrophage cell line: gene silencing, toxicityand off-target gene expression. Pharm. Res., 2012; 29: 669-682
  Google Scholar
• 50. Jiang P., Liu R., Zheng Y., Liu X., Chang L., Xiong S., Chu Y.: MiR–34a inhibits lipopolysaccharide-induced inflammatory responsethrough targeting Notch1 in murine macrophages. Exp. Cell Res.,2012; 318: 1175-1184
  Google Scholar
• 51. Johansen P., Weiss A., Bunter A., Waeckerle-Men Y., FettelschossA., Odermatt B., Kundig T.M.: Clemastine causes immune suppressionthrough inhibition of extracellular signal-regulated kinase–dependent proinflammatory cytokines. J. Allergy Clin. Immunol.,2011; 128: 1286-1294
  Google Scholar
• 52. Johnson E., Buhtoiarov I.N., Baldeshwiler M.J., Felder M.A., vanRooijen N., Sondel P.M., Rakhmilevich A.L.: Enhanced T cell-independentantitumor effect of cyclophosphamide combined with anti–CD40 mAb and CpG in mice. J. Immunother., 2011; 34: 76-84
  Google Scholar
• 53. Kappert K., Tsuprykov O., Kaufmann J., Fritzsche J., Ott I., GoebelM., Bahr I.N., Hassle P-L., Gust R., Fleck E., Unger T., Stawowy P.,Kintscher U.: Chronic treatment with losartan results in sufficientserum levels of the metabolite EXP3179 for PPARγ activation. Hypertension,2009; 54: 738-743
  Google Scholar
• 54. Koch M., Mollenkopf H-J., Klemm U., Meyer T.F.: Induction ofmicroRNA-155 is TLR- and type IV secretion system-dependent inmacrophages and inhibits DNA-damage induced apoptosis. Proc.Natl. Acad. Sci. USA, 2012; 109: E1153-E1162
  Google Scholar
• 55. Kojima C., Ino J., Ishii H., Nitta K., Yoshida M.: MMP-9 inhibitionby ACE inhibitor reduces oxidized LDL-mediated foam-cell formation.J. Atheroscler. Thromb., 2010; 17: 97-105
  Google Scholar
• 56. Kraaij M.D., van der Kooij S.W., Reinders M.E., Koekkoek K., RabelinkT.J., van Kooten C., Gelderman K.A.: Dexamethasone increasesROS production and T cell suppressive capacity by anti-inflammatorymacrophages. Mol. Immunol., 2011; 49: 549-557
  Google Scholar
• 57. Krishnamoorthy S., Recchiuti A., Chiang N., Fredman G., SerhanC.N.: Resolvin D1 receptor stereoselectivity and regulation ofinflammation and proresolving MicroRNAs. Am. J. Pathol., 2012;180: 2018-2027
  Google Scholar
• 58. Kulshreshtha A., Ahmad T., Agrawal A., Ghosh B.: Proinflammatoryrole of epithelial cell-derived exosomes in allergic airwayinflammation. J. Allergy Clin. Immunol., 2013; 131: 1194-1203
  Google Scholar
• 59. Kumar R., Halder P., Sahu S.K., Kumar M., Kumari M., Jana K.,Ghosh Z., Sharma P., Kundu M., Basu J.: Identification of a novelrole of ESAT-6-dependent miR-155 induction during infection ofmacrophages with Mycobacterium tuberculosis. Cell. Microbiol., 2012;14: 1620-1631
  Google Scholar
• 60. Kwok S.K., Cho M.L., Park M.K., Oh H.J., Park J.S., Her Y.M., LeeS.Y., Youn J., Ju J.H., Park K.S., Kim S.I., Kim H.Y., Park S.H.: Interleukin-21promotes osteoclastogenesis in humans with rheumatoidarthritis and in mice with collagen-induced arthritis. ArthritisRheum., 2012; 64: 740-751
  Google Scholar
• 61. Lagrange B., Martin R.Z., Droin N., Aucagne R., Paggetti J., LargeotA., Itzykson R., Solary E., Delva L., Bastie J.N.: A role for miR-142-3p in colony-stimulating factor 1-induced monocyte differentiationinto macrophages. Biochim. Biophys. Acta, 2013; 1833: 1936-1946
  Google Scholar
• 62. Lai L., Song Y., Liu Y., Chen Q., Han Q., Chen W., Pan T., Zhang Y.,Cao X., Wang Q.: MicroRNA-92a negatively regulates TLR-triggeredinflammatory response in macrophages by targeting MKK4 kinase.J. Biol. Chem., 2013; 288: 7956-7967
  Google Scholar
• 63. Larrayoz I.M., Pang T., Benicky J., Pavel J., Sanchez-Lemus E., SaavedraJ.M.: Candesartan reduces the innate immune response to lipopolysaccharidein human monocytes. J. Hypertens., 2009; 27: 2365-2376
  Google Scholar
• 64. Lasser C., Alikhani V.S., Ekstrom K., Eldh M., Paredes P.T., BossiosA., Sjostrand M., Gabrielsson S., Lotvall J., Valadi H.: Human saliva,plasma and breast milk exosomes contain RNA: uptake by macrophages.J. Transl. Med., 2011; 9: 9-17
  Google Scholar
• 65. Lee J.H., Jin H., Shim H.E., Kim H.N., Ha H., Lee Z.H.: Epigallocatechin-3-gallateinhibits osteoclastogenesis by down-regulating c–Fos expression and suppressing the nuclear factor-κB signal. Mol.Pharmacol., 2010; 77: 17-25
  Google Scholar
• 66. Lee J.Y., Lee M.S., Choi H.J., Choi J.W., Shin T., Woo H.C., Kim J.I.,Kim H.R.: Hexane fraction from Laminaria japonica exerts anti-inflammatoryeffect on lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophagesvia inhibiting NF-κB pathway. Eur. J. Nutr., 2013; 52: 409-421
  Google Scholar
• 67. Leonard B.E.: The immune system, depression and the actionof antidepressants. Prog. Neuro-Psychopharmacol. Biol. Psychiatry,2001; 25: 767-780
  Google Scholar
• 68. Li Y., Fan X., He X., Sun H., Zou Z., Yuan H., Xu H., Wang C.,Shi X.: MicroRNA-466I inhibits antiviral innate immune responseby targeting interferon-alpha. Cell. Mol. Immunol., 2012; 9: 497-502
  Google Scholar
• 69. Lieb J.: The immunostimulating and antimicrobial properties oflithium and antidepressants. J. Infect., 2004; 49: 88-93
  Google Scholar
• 70. Lis M., Obmińska-Mrukowicz B.: Effects of bestatin on phagocyticcells in cyclophosphamide-treated mice. Pharmacol. Rep., 2011;63: 1481-1490
  Google Scholar
• 71. Liu G., Friggeri A., Yang Y., Park Y.J., Tsuruta Y., Abraham E.: miR-147, a microRNA that is induced upon Toll-like receptor stimulation,regulates murine macrophage inflammatory responses. Proc. Natl.Acad. Sci. USA, 2009; 106: 15819-15824
  Google Scholar
• 72. Lojek A., Ciz M., Pekarova M., Ambrozova G., Vasicek O., MoravcovaJ., Kubala L., Drabikova K., Jancinova V., Perecko T., Pecivova J.,Macickova T., Nosal R.: Modulation of metabolic activity of phagocytesby antihistamines. Interdiscip. Toxicol., 2011; 4: 15-19
  Google Scholar
• 73. Lu X., Mu E., Wei Y., Riethdorf S., Yang Q., Yuan M., Yan J., Hua Y.,Tiede B.J., Lu X., Haffty B.G., Pantel K., Massague J., Kang Y.: VCAM- 1 promotes osteolytic expansion of indolent bone micrometastasisof breast cancer by engaging α4β1-positive osteoclast progenitors.Cancer Cell, 2011; 20: 701-714
  Google Scholar
• 74. Marcinkiewicz J., Bryniarski K., Ptak W.: Cyclophosphamideuncovers two separate macrophage subpopulations with oppositeimmunogenic potential and different patterns of monokine production.Cytokine, 1994; 6: 472-477
  Google Scholar
• 75. Monk C.E., Hutvagner G., Arthur J.S.: Regulation of miRNA transcriptionin macrophages in response to Candida albicans. PLoS One,2010; 5: e13669
  Google Scholar
• 76. Murray P.J., Wynn T.A.: Obstacles and opportunities for understandingmacrophage polarization. J. Leukoc. Biol., 2011; 89: 557-563
  Google Scholar
• 77. Murray P.J., Wynn T.A.: Protective and pathogenic functions ofmacrophage subsets. Nat. Rev. Immunol., 2011; 11: 723-737
  Google Scholar
• 78. Nahid M.A., Satoh M., Chan E.K.: MicroRNA in TLR signaling andendotoxin tolerance. Cell. Mol. Immunol., 2011; 8: 388-403
  Google Scholar
• 79. Nahid M.A., Yao B., Dominguez-Gutierrez P.R., Kesavalu L., SatohM., Chan E.K.: Regulation of TLR2-mediated tolerance and cross–tolerance through IRAK4 modulation by miR-132 and miR-212. J.Immunol., 2013; 190: 1250-1263
  Google Scholar
• 80. Nazari-Jahantigh M., Wei Y., Noels H., Akhtar S., Zhou Z., KoenenR.R., Heyll K., Gremse F., Kiessling F., Grommes J., Weber C., Schober A.: MicroRNA-155 promotes atherosclerosis by repressing Bcl6 inmacrophages. J. Clin. Invest., 2012; 122: 4190-4202
  Google Scholar
• 81. Nazimek K., Bryniarski K.: The biological activity of macrophagesin health and disease. Postępy Hig. Med. Dośw., 2012; 66: 507-520
  Google Scholar
• 82. Nazimek K., Nowak B., Ptak W., Bryniarski K.: Exosomal T cellsuppressor factor inhibits the generation of reactive oxygen intermediatesin murine peritoneal macrophages. Immunology, 2012; 137 (Suppl. 1): 693
  Google Scholar
• 83. Nguyen D.G., Booth A., Gould S.J., Hildreth J.E.: Evidence thatHIV budding in primary macrophages occurs through the exosomerelease pathway. J. Biol. Chem., 2003; 278: 52347-52354
  Google Scholar
• 84. Nilsson S., Moller C., Jirstrom K., Lee A., Busch S., Lamb R., LandbergG.: Downregulation of miR-92a is associated with aggressivebreast cancer features and increased tumour macrophage infiltration.PLoS One, 2012; 7: e36051
  Google Scholar
• 85. Palma A., Sainaghi P.P, Amoruso A., Fresu L.G., Avanzi G., PirisiM., Brunelleschi S.: Peroxisome proliferator-activated receptor–gamma expression in monocytes/macrophages from rheumatoidarthritis patients: relation to disease activity and therapy efficacy– a pilot study. Rheumatology, 2012; 51: 1942-1952
  Google Scholar
• 86. Pang T., Benicky J., Wang J., Orecna M., Sanchez-Lemus E., SaavedraJ.M.: Telmisartan ameliorates lipopolysaccharide-induced innateimmune response through peroxisome proliferator-activated receptor-γactivation in human monocytes. J. Hypertens., 2012; 30: 87-96
  Google Scholar
• 87. Ponomarev E.D., Veremeyko T., Weiner H.L.: MicroRNAs areuniversal regulators of differentiation, activation, and polarizationof microglia and macrophages in normal and diseased CNS. Glia,2013; 61: 91-103
  Google Scholar
• 88. Purohit V., Rapaka R.S., Rutter J., Shurtleff D.: Do opioids activatelatent HIV-1 by down-regulating anti-HIV microRNAs? J. NeuroimmunePharmacol., 2012; 7: 519-523
  Google Scholar
• 89. Qu Y., Franchi L., Nunez G., Dubyak G.R.: Nonclassical IL-1β secretionstimulated by P2X7 receptors is dependent on inflammasomeactivation and correlated with exosome release in murine macrophages.J. Immunol., 2007; 179: 1913-1925
  Google Scholar
• 90. Qu Y., Ramachandra L., Mohr S., Franchi L., Harding C.V., NunezG., Dubyak G.R.: P2X7 receptor-stimulated secretion of MHC class–II-containing exosomes requires the ASC/NLPR3 inflammasomebut is independent of caspase-1. J. Immunol., 2009; 182: 5052-5062
  Google Scholar
• 91. Qureshi A.A., Guan X.Q., Reis J.C., Papasian C.J., Jabre S., MorrisonD.C., Qureshi N.: Inhibition of nitric oxide and inflammatorycytokines in LPS-stimulated murine macrophages by resveratrol,a potent proteasome inhibitor. Lipids Health Dis., 2012; 11: 76-92
  Google Scholar
• 92. Ramirez C.M., Rotllan N., Vlassov A.V., Davalos A., Li M., GoedekeL., Aranda J.F., Cirera-Salinas D., Araldi E., Salerno A., Wanschel A.,Zavadil J., Castrillo A., Kim J., Suarez Y., Fernandez-Hernando C.: Controlof cholesterol metabolizm and plasma high-density lipoproteinlevels by microRNA-144. Circ. Res., 2013; 112: 1592-1601
  Google Scholar
• 93. Rapisarda A., Pastorino S., Massazza S., Varesio L., Bosco M.C.:Antagonistic effect of picolinic acid and interferon-γ on macrophageinflammatory protein-1α/β production. Cell. Immunol., 2002;220: 70-80
  Google Scholar
• 94. Ruckerl D., Jenkins S.J., Laqtom N.N., Gallagher I.J., SutherlandT.E., Duncan S., Buck A.H., Allen J.E.: Induction of IL-4Rα-dependentmicroRNAs identifies PI3K/Akt signaling as essential for IL-4-drivenmurine macrophage proliferation in vivo. Blood, 2012; 120: 2307-2316
  Google Scholar
• 95. Sadeghi-Hashjin G., Nijkamp F.P., Henricks P.A., Folkerts G.: Sodiumcromoglycate and doxantrazole are oxygen radical scavengers.Eur. Respir. J., 2002; 20: 867-872
  Google Scholar
• 96. Schnitger A.K., Machova A., Mueller R.U., Androulidaki A., SchermerB., Pasparakis M., Kronke M., Papadopoulou N.: Listeria monocytogenesinfection in macrophages induces vacuolar-dependent hostmiRNA response. PLoS One, 2011; 6: e27435
  Google Scholar
• 97. Shibuya H., Nakasa T., Adachi N., Nagata Y., Ishikawa M., Deie M.,Suzuki O., Ochi M.: Overexpression of microRNA-223 in rheumatoidarthritis synovium controls osteoclast differentiation. Mod. Rheumatol.,2013; 23: 674-685
  Google Scholar
• 98. Shimada K., Hirano E., Kimura T., Fujita M., Kishimoto C.: Carvedilolreduces the severity of atherosclerosis in apolipoprotein E–deficient mice via reducing superoxide production. Exp. Biol. Med.,2012; 237: 1039-1044
  Google Scholar
• 99. Shimada K., Murayama T., Yokode M., Kita T., Fujita M., KishimotoC.: Olmesartan, a novel angiotensin II type 1 receptor antagonist,reduces severity of atherosclerosis in apolipoprotein E deficientmice associated with reducing superoxide production. Nutr. Metab.Cardiovasc. Dis., 2011; 21: 672-678
  Google Scholar
• 100. Shimada K., Murayama T., Yokode M., Kita T., Uzui H., UedaT., Lee J.D., Kishimoto C.: N-acetylcysteine reduces the severity ofatherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice by reducing superoxideproduction. Circ. J., 2009; 73: 1337-1341
  Google Scholar
• 101. Shin J.S., Baek S.R., Sohn S., Cho Y., Lee K.T.: Anti-inflammatoryeffect of pelubiprofen, 2-[4-(oxocyclohexylidenemethyl)-phenyl]propionic acid, mediated by dual suppression of COX activity andLPS-induced inflammatory gene expression via NF-κB inactivation.J. Cell. Biochem., 2011; 112: 3594-3603
  Google Scholar
• 102. Shukla A.K., Patra S., Dubey V.K.: Nanospheres encapsulatinganti-leishmanial drugs for their specific macrophage targeting, reducedtoxicity, and deliberate intracellular release. Vector BorneZoonotic Dis., 2012; 12: 953-960
  Google Scholar
• 103. Sikora E., Ptak W., Bryniarski K.: Immunoregulacja poprzez interferencyjnyRNA – mechanizmy, rola, perspektywy. Postępy Hig.Med. Dośw., 2011; 65: 482-495
  Google Scholar
• 104. Silva R.C., Landgraf M.A., Hiyane M.I., Pacheco-Silva A., CamaraN.O., Landgraf R.G.: Leukotrienes produced in allergic lunginflammation activate alveolar macrophages. Cell. Physiol. Biochem.,2010; 26: 319-326
  Google Scholar
• 105. Silverman J.M., Clos J., de’Oliveira C.C., Shirvani O., Fang Y.,Wang C., Foster L.J., Reiner N.E.: An exosome-based secretion pathwayis responsible for protein export from Leishmania and communicationwith macrophages. J. Cell Sci., 2010; 123: 842-852
  Google Scholar
• 106. Silverman J., Reiner N.: Exosomes and other microvesicles ininfection biology: organelles with unanticipated phenotypes. Cell.Microbiol., 2011; 13: 1-9
  Google Scholar
• 107. Singh P.P., Smith V.L., Karakousis P.C., Schorey J.S.: Exosomesisolated from mycobacteria-infected mice or cultured macrophagescan recruit and activate immune cells in vitro and in vivo. J. Immunol.,2012; 189: 777-785
  Google Scholar
• 108. Sissons J.R., Peschon J.J., Schmitz F., Suen R., Gilchrist M., AderemA.: Cutting edge: microRNA regulation of macrophage fusioninto multinucleated giant cells. J. Immunol., 2012; 189: 23-27
  Google Scholar
• 109. Sun Y., Cai J., Ma F., Lu P., Huang H., Zhou J.: miR-155 mediatessuppressive effect of progesterone on TLR3, TLR4-triggered immuneresponse. Immunol. Lett., 2012; 146: 25-30
  Google Scholar
• 110. Suzuki M., Teramoto S., Katayama H., Ohga E., Matsuse T., OuchiY.: Effects of angiotensin-converting enzyme (ACE) inhibitors onoxygen radical production and generation by murine lung alveolarmacrophages. J. Asthma, 1999; 36: 665-670
  Google Scholar
• 111. Teramoto S., Suzuki M., Matsuse T., Ouchi Y.: Effect of ambroxolon oxygen radical production and generation by bronchoalveolarlavage cells in young and aged guinea pigs. Jpn. J. Pharmacol.,1998; 78: 429-434
  Google Scholar
• 112. Thulin P., Wei T., Werngren O., Cheung L., Fisher R.M., GranderD., Corcoran M., Ehrenborg E.: MicroRNA-9 regulates the expressionof peroxisome proliferator-activated receptor δ in human monocytesduring the inflammatory response. Int. J. Mol. Med., 2013;31: 1003-1010
  Google Scholar
• 113. Tuckermann J., Kleiman A., Moriggl R., Spanbroek R., NeumannA., Illing A., Clausen B., Stride B., Förster I., Habenicht A., ReichardtH., Tronche F., Schmid W., Schütz G.: Macrophages and neutrophilsare the targets for immune suppression by glucocorticoids in contactallergy. J. Clin. Invest., 2007; 117: 1381-1390
  Google Scholar
• 114. Vicentino A.R.R., Carneiro V.C., Amarante A. de M., BenjamimC.F., de Aguiar A.P., Fantappie M.R.: Evaluation of 3-(3-chloro-phenyl)-5-(4-pyridyl)-4,5-dihydroisoxazoleas a novel anti-inflammatorydrug candidate. PLoS One, 2012; 7: e39104
  Google Scholar
• 115. Villalonga N., David M., Bielanska J., Vicente R., Comes N., ValenzuelaC., Felipe A.: Immunomodulation of voltage-dependent K+channels in macrophages: molecular and biophysical consequences.J. Gen. Physiol., 2010; 135: 135-147
  Google Scholar
• 116. Wang X., Ye L., Hou W., Zhou Y., Wang Y.J., Metzger D.S., Ho W.Z.:Cellular microRNA expression correlates with susceptibility of monocytes/macrophagesto HIV-1 infection. Blood, 2009; 113: 671-674
  Google Scholar
• 117. Wang X., Ye L., Zhou Y., Liu M.Q., Zhou D.J., Ho W.Z.: Inhibitionof anti-HIV microRNA expression. A mechanism for opioid-mediatedenhancement of HIV infection of monocytes. Am. J. Pathol.,2011; 178: 41-47
  Google Scholar
• 118. Wei J., Huang X., Zhang Z., Jia W., Zhao Z., Zhang Y., Liu X., XuG.: MyD88 as a target of microRNA-203 in regulation of lipopolysaccharideor Bacille Calmette-Guerin induced inflammatory responseof macrophage RAW264.7 cells. Mol. Immunol., 2013; 55: 303-309
  Google Scholar
• 119. Wei Y., Nazari-Jahantigh M., Chan L., Zhu M., Heyll K., Corbalan-CamposJ., Hartmann P., Thiemann A., Weber C., Schober A.:The microRNA-342-5p fosters inflammatory macrophage activationthrough an Akt1- and microRNA-155-dependent pathway duringatherosclerosis. Circulation, 2013; 127: 1609-1619
  Google Scholar
• 120. Xia W., Hilgenbrink A.R., Matteson E.L., Lockwood M.B., ChengJ.X., Low P.S.: A functional folate receptor is induced during macrophageactivation and can be used to target drugs to activated macrophages.Blood, 2009; 113: 438-446
  Google Scholar
• 121. Xia Z., Chen C., Chen P., Xie H., Luo X.: MicroRNAs and theirroles in osteoclast differentiation. Front. Med., 2011; 5: 414-419
  Google Scholar
• 122. Xiao C., Calado D.P., Galler G., Thai T.H., Patterson H.C., WangJ., Rajewsky N., Bender T.P., Rajewsky K.: MiR-150 controls B celldifferentiation by targeting the transcription factor c-Myb. Cell,2007; 131: 146-159
  Google Scholar
• 123. Yang M., Chen J., Su F., Yu B., Su F., Lin L., Liu Y., Huang J-D., SongE.: Microvesicles secreted by macrophages shuttle invasion-potentiatingmicroRNAs into breast cancer cells. Mol. Cancer, 2011; 10: 117-129
  Google Scholar
• 124. Yang M., Kumar R.K., Hansbro P.M., Foster P.S.: Emerging rolesof pulmonary macrophages in driving the development of severeasthma. J. Leukoc. Biol., 2012; 91: 557-569
  Google Scholar
• 125. Zhang J., Xie S., Ma W., Teng Y., Tian Y., Huang X., Zhang Y.:A newly identified miRNA, mmu-miR-7578, functions as a negativeregulator on inflammatory cytokines TNFα and IL6 via targetingEGR1 in vivo. J. Biol. Chem., 2013; 288: 4310-4320
  Google Scholar
• 126. Zhang Q., Atsuta I., Liu S., Chen C., Shi S., Shi S., Le A.D.: IL–17-mediated M1/M2 macrophage alteration contributes to pathogenesisof bisphosphonate-related osteonecrosis of the jaws. Clin.Cancer Res., 2013; 19: 3176-3188
  Google Scholar
• 127. Zheng K., Chen D.S., Wu Y.Q., Xu X.J., Zhang H., Chen C.F., ChenH.C., Liu Z.F.: MicroRNA expression profile in RAW246.7 cells in responseto Brucella melitensis infection. Int. J. Biol. Sci., 2012; 8: 1013-1022
  Google Scholar
• 128. Zheng Y., Yang Y., Li Y., Xu L., Wang Y., Guo Z., Song H., Yang M.,Luo B., Zheng A., Li P., Zhang Y., Ji G., Yu Y.: Ephedrine hydrochlorideinhibits PGN-induced inflammatory responses by promoting IL-10production and decreasing proinflammatory cytokine secretion viathe PI3K/Akt/GSK3β pathway. Cell. Mol. Immunol., 2013; 10: 330-337
  Google Scholar
• 129. Zhou Y., Wang X., Liu M., Hu Q., Song L., Ye L., Zhou D., Ho W.:A critical function of toll-like receptor-3 in the induction of anti–human immunodeficiency virus activities in macrophages. Immunology,2010; 131: 40-49
  Google Scholar
• 130. Zhu D., Pan C., Li L., Bian Z., Lv Z., Shi L., Zhang J., Li D., Gu H.,Zhang C.Y., Liu Y., Zen K.: MicroRNA-17/20a/106a modulate macrophageinflammatory responses through targeting signal-regulatoryprotein α. J. Allergy Clin. Immunol., 2013; 132: 426-436.e8
  Google Scholar
• 131. Zhu J., Chen Q., Xia X., Mo P., Shen Y., Yu C.: Mycoepoxydienesuppresses RANKL-induced osteoclast differentiation and reducesovariectomy-induced bone loss in mice. Appl. Microbiol. Biotechnol.,2013; 97: 767-774
  Google Scholar
• 132. Zhu X.D., Sun H.C., Xu H.X., Kong L.Q., Chai Z.T., Lu L., ZhangJ.B., Gao D.M., Wang W.Q., Zhang W., Zhuang P.Y., Wu W.Z., Wang L.,Tang Z.Y.: Antiangiogenic therapy promoted metastasis of hepatocellularcarcinoma by suppressing host-derived interleukin-12b inmouse models. Angiogenesis, 2013; 16: 809-820
  Google Scholar
• 133. Zhuang G., Meng C., Guo X., Cheruku P.S., Shi L., Xu H., Li H.,Wang G., Evans A.R., Safe S., Wu C., Zhou B.: A novel regulator of macrophageactivation: miR-223 in obesity-associated adipose tissueinflammation. Circulation, 2012; 125: 2892-2903
  Google Scholar
• 134. Zimmermann H.W., Trautwein C., Tacke F.: Functional role ofmonocytes and macrophages for the inflammatory response in acuteliver injury. Front. Physiol., 2012; 3: 1-18
  Google Scholar
• 135. Zordan P., Sciorati C., Campana L., Cottone L., Clementi E., QueriniP.R., Brunelli S.: The nitric oxide-donor molsidomine modulatesthe innate inflammatory response in a mouse model of musculardystrophy. Eur. J. Pharmacol., 2013; 715: 296-303
  Google Scholar
• 136. Zorzanelli Rocha V., Folco E.J.: Inflammatory concepts of obesity.Int. J. Inflam., 2011; 2011: ID 529061
  Google Scholar

Pełna treść artykułu